ຂອບໃຈທີ່ທ່ານເຂົ້າມາຢ້ຽມຊົມ Nature.com. ໂປຣແກຣມທ່ອງເວັບເວີຊັນທີ່ທ່ານກຳລັງໃຊ້ຢູ່ນັ້ນຮອງຮັບ CSS ໄດ້ຈຳກັດ. ເພື່ອໃຫ້ໄດ້ຜົນດີທີ່ສຸດ, ພວກເຮົາແນະນຳໃຫ້ທ່ານໃຊ້ໂປຣແກຣມທ່ອງເວັບເວີຊັນໃໝ່ກວ່າ (ຫຼື ປິດໂໝດຄວາມເຂົ້າກັນໄດ້ໃນ Internet Explorer). ໃນລະຫວ່າງນີ້, ເພື່ອຮັບປະກັນການຮອງຮັບຢ່າງຕໍ່ເນື່ອງ, ພວກເຮົາກຳລັງສະແດງເວັບໄຊໂດຍບໍ່ມີຮູບແບບ ຫຼື JavaScript.
ຢາຂ້າເຊື້ອລາມັກຖືກນຳໃຊ້ໃນລະຫວ່າງການອອກດອກຂອງຕົ້ນໄມ້ ແລະ ສາມາດຄຸກຄາມຕໍ່ແມງໄມ້ທີ່ປະສົມເກສອນ. ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ມີຄວາມຮູ້ໜ້ອຍກ່ຽວກັບວິທີທີ່ແມງທີ່ປະສົມເກສອນທີ່ບໍ່ແມ່ນເຜິ້ງ (ເຊັ່ນ: ເຜິ້ງດ່ຽວ, Osmia cornifrons) ຕອບສະໜອງຕໍ່ກັບການຕິດຕໍ່ ແລະ ຢາຂ້າເຊື້ອລາທີ່ເປັນລະບົບທີ່ມັກໃຊ້ກັບໝາກໂປມໃນລະຫວ່າງການອອກດອກ. ຊ່ອງຫວ່າງຄວາມຮູ້ນີ້ຈຳກັດການຕັດສິນໃຈດ້ານກົດລະບຽບທີ່ກຳນົດຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນທີ່ປອດໄພ ແລະ ເວລາຂອງການສີດຢາຂ້າເຊື້ອລາ. ພວກເຮົາໄດ້ປະເມີນຜົນກະທົບຂອງຢາຂ້າເຊື້ອລາສອງຊະນິດທີ່ຕິດຕໍ່ (captan ແລະ mancozeb) ແລະ ຢາຂ້າເຊື້ອລາລະຫວ່າງຊັ້ນ/ລະບົບພືດສີ່ຊະນິດ (ciprocycline, myclobutanil, pyrostrobin ແລະ trifloxystrobin). ຜົນກະທົບຕໍ່ການເພີ່ມນ້ຳໜັກຂອງຕົວອ່ອນ, ການຢູ່ລອດ, ອັດຕາສ່ວນທາງເພດ ແລະ ຄວາມຫຼາກຫຼາຍຂອງເຊື້ອແບັກທີເຣຍ. ການປະເມີນຜົນໄດ້ດຳເນີນໂດຍໃຊ້ການວິເຄາະທາງປາກຊຳເຮື້ອ ເຊິ່ງເກສອນດອກໄມ້ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວດ້ວຍຢາໃນສາມຄັ້ງໂດຍອີງໃສ່ປະລິມານທີ່ແນະນຳໃນປະຈຸບັນສຳລັບການນຳໃຊ້ໃນພາກສະໜາມ (1X), ປະລິມານເຄິ່ງໜຶ່ງ (0.5X) ແລະ ປະລິມານຕ່ຳ (0.1X). ຢາ mancozeb ແລະ pyritisoline ທັງໝົດຊ່ວຍຫຼຸດຜ່ອນນ້ຳໜັກຕົວ ແລະ ການຢູ່ລອດຂອງຕົວອ່ອນໄດ້ຢ່າງຫຼວງຫຼາຍ. ຫຼັງຈາກນັ້ນ, ພວກເຮົາໄດ້ຈັດລຳດັບ gene 16S ເພື່ອລະບຸລັກສະນະຂອງຕົວອ່ອນຂອງ mancozeb, ເຊື້ອລາທີ່ເປັນສາເຫດຂອງການຕາຍສູງສຸດ. ພວກເຮົາພົບວ່າຄວາມຫຼາກຫຼາຍ ແລະ ຄວາມອຸດົມສົມບູນຂອງເຊື້ອແບັກທີເຣຍໄດ້ຫຼຸດລົງຢ່າງຫຼວງຫຼາຍໃນຕົວອ່ອນທີ່ກິນເກສອນດອກໄມ້ທີ່ຮັກສາດ້ວຍ mancozeb. ຜົນການທົດລອງທາງຫ້ອງທົດລອງຂອງພວກເຮົາຊີ້ໃຫ້ເຫັນວ່າການສີດຢາຂ້າເຊື້ອລາເຫຼົ່ານີ້ບາງຊະນິດໃນລະຫວ່າງການອອກດອກເປັນອັນຕະລາຍຕໍ່ສຸຂະພາບຂອງ O. cornifrons. ຂໍ້ມູນນີ້ແມ່ນກ່ຽວຂ້ອງກັບການຕັດສິນໃຈດ້ານການຄຸ້ມຄອງໃນອະນາຄົດກ່ຽວກັບການນໍາໃຊ້ຜະລິດຕະພັນປ້ອງກັນຕົ້ນໄມ້ໃຫ້ໝາກຢ່າງຍືນຍົງ ແລະ ເປັນພື້ນຖານສໍາລັບຂະບວນການຄວບຄຸມທີ່ມີຈຸດປະສົງເພື່ອປົກປ້ອງຜູ້ປະສົມເກສອນດອກໄມ້.
ເຜິ້ງ Mason ດ່ຽວ Osmia cornifrons (Hymenoptera: Megachilidae) ໄດ້ຖືກນຳເຂົ້າມາໃນສະຫະລັດອາເມລິກາຈາກປະເທດຍີ່ປຸ່ນໃນທ້າຍຊຸມປີ 1970 ແລະຕົ້ນຊຸມປີ 1980, ແລະຊະນິດພັນດັ່ງກ່າວມີບົດບາດສຳຄັນໃນການຖ່າຍເກສອນໃນລະບົບນິເວດທີ່ມີການຄຸ້ມຄອງນັບຕັ້ງແຕ່ນັ້ນມາ. ປະຊາກອນເຜິ້ງທີ່ໄດ້ຮັບທຳມະຊາດນີ້ແມ່ນສ່ວນໜຶ່ງຂອງເຜິ້ງປ່າປະມານ 50 ຊະນິດທີ່ເສີມເຜິ້ງທີ່ຖ່າຍເກສອນໃນສວນໝາກອາມອນ ແລະ ໝາກໂປມໃນສະຫະລັດອາເມລິກາ2,3. ເຜິ້ງ Mason ປະເຊີນກັບສິ່ງທ້າທາຍຫຼາຍຢ່າງ, ລວມທັງການແຕກແຍກຂອງທີ່ຢູ່ອາໄສ, ເຊື້ອພະຍາດ, ແລະຢາປາບສັດຕູພືດ3,4. ໃນບັນດາຢາຂ້າແມງໄມ້, ຢາຂ້າເຊື້ອລາຊ່ວຍຫຼຸດຜ່ອນການເພີ່ມພະລັງງານ, ການຫາອາຫານ5 ແລະການປັບປຸງຮ່າງກາຍ6,7. ເຖິງແມ່ນວ່າການຄົ້ນຄວ້າທີ່ຜ່ານມາຊີ້ໃຫ້ເຫັນວ່າສຸຂະພາບຂອງເຜິ້ງ Mason ໄດ້ຮັບອິດທິພົນໂດຍກົງຈາກຈຸລິນຊີທີ່ອາໄສຢູ່ຮ່ວມກັນ ແລະ ທີ່ບໍ່ແຜ່ກະຈາຍ,8,9 ເພາະວ່າເຊື້ອແບັກທີເຣັຍ ແລະ ເຊື້ອເຫັດສາມາດມີອິດທິພົນຕໍ່ໂພຊະນາການ ແລະ ການຕອບສະໜອງຂອງພູມຕ້ານທານ, ຜົນກະທົບຂອງການສຳຜັດກັບຢາຂ້າເຊື້ອລາຕໍ່ຄວາມຫຼາກຫຼາຍຂອງຈຸລິນຊີຂອງເຜິ້ງ Mason ຫາກໍ່ເລີ່ມຕົ້ນການສຶກສາ.
ຢາຂ້າເຊື້ອລາທີ່ມີຜົນກະທົບຕ່າງໆ (ຕິດຕໍ່ ແລະ ທົ່ວຮ່າງກາຍ) ແມ່ນຖືກສີດພົ່ນໃນສວນໝາກໄມ້ກ່ອນ ແລະ ໃນລະຫວ່າງການອອກດອກເພື່ອປິ່ນປົວພະຍາດຕ່າງໆເຊັ່ນ: ໂລກຂີ້ກະເທີ່, ໂລກເນົ່າເປື່ອຍຂົມ, ໂລກເນົ່າເປື່ອຍສີນ້ຳຕານ ແລະ ເຊື້ອລາແປ້ງ10,11. ຢາຂ້າເຊື້ອລາຖືກຖືວ່າບໍ່ເປັນອັນຕະລາຍຕໍ່ຜູ້ປະສົມເກສອນ, ສະນັ້ນພວກມັນຈຶ່ງຖືກແນະນຳໃຫ້ຊາວສວນໃນຊ່ວງເວລາອອກດອກ; ການສຳຜັດ ແລະ ການກິນຢາຂ້າເຊື້ອລາເຫຼົ່ານີ້ໂດຍເຜິ້ງແມ່ນເປັນທີ່ຮູ້ຈັກກັນດີ, ຍ້ອນວ່າມັນເປັນສ່ວນໜຶ່ງຂອງຂະບວນການລົງທະບຽນຢາປາບສັດຕູພືດໂດຍອົງການປົກປ້ອງສິ່ງແວດລ້ອມຂອງສະຫະລັດ ແລະ ອົງການຄຸ້ມຄອງແຫ່ງຊາດອື່ນໆຈຳນວນຫຼາຍ12,13,14. ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ຜົນກະທົບຂອງຢາຂ້າເຊື້ອລາຕໍ່ຜູ້ທີ່ບໍ່ແມ່ນເຜິ້ງແມ່ນເປັນທີ່ຮູ້ຈັກໜ້ອຍກວ່າເພາະວ່າມັນບໍ່ຕ້ອງການພາຍໃຕ້ຂໍ້ຕົກລົງການອະນຸຍາດການຕະຫຼາດໃນສະຫະລັດ15. ນອກຈາກນັ້ນ, ໂດຍທົ່ວໄປແລ້ວບໍ່ມີໂປໂຕຄອນມາດຕະຖານສຳລັບການທົດສອບເຜິ້ງດ່ຽວ16,17, ແລະ ການຮັກສາອານານິຄົມທີ່ສະໜອງເຜິ້ງໃຫ້ການທົດສອບແມ່ນສິ່ງທ້າທາຍ18. ການທົດລອງເຜິ້ງທີ່ໄດ້ຮັບການຄຸ້ມຄອງທີ່ແຕກຕ່າງກັນກຳລັງດຳເນີນການເພີ່ມຂຶ້ນໃນເອີຣົບ ແລະ ສະຫະລັດອາເມລິກາເພື່ອສຶກສາຜົນກະທົບຂອງຢາປາບສັດຕູພືດຕໍ່ເຜິ້ງປ່າ, ແລະ ໂປໂຕຄອນມາດຕະຖານໄດ້ຖືກພັດທະນາຂຶ້ນເມື່ອບໍ່ດົນມານີ້ສຳລັບ O. cornifrons19.
ເຜິ້ງທີ່ມີເຂົາແມ່ນ monocytes ແລະຖືກນໍາໃຊ້ໃນການຄ້າໃນພືດປາຄາບເປັນອາຫານເສີມຫຼືທົດແທນເຜິ້ງນໍ້າເຜິ້ງ. ເຜິ້ງເຫຼົ່ານີ້ເກີດລະຫວ່າງເດືອນມີນາແລະເດືອນເມສາ, ໂດຍເຜິ້ງເພດຜູ້ທີ່ມີອາຍຸຫຼາຍກວ່າເຜິ້ງຈະເກີດກ່ອນເຜິ້ງເພດແມ່ສາມຫາສີ່ມື້. ຫຼັງຈາກການຫາຄູ່, ເຜິ້ງເພດແມ່ຈະເກັບເກສອນດອກໄມ້ແລະນໍ້າຫວານຢ່າງຫ້າວຫັນເພື່ອສະໜອງເຊວໄຂ່ລູກພາຍໃນຊ່ອງຮັງທີ່ເປັນທໍ່ (ທຳມະຊາດຫຼືທຽມ)1,20. ໄຂ່ຈະຖືກວາງຢູ່ເທິງເກສອນດອກໄມ້ພາຍໃນເຊວ; ຫຼັງຈາກນັ້ນ, ເຜິ້ງເພດແມ່ຈະສ້າງຝາດິນເຜົາກ່ອນທີ່ຈະກະກຽມເຊວຕໍ່ໄປ. ຕົວອ່ອນໄລຍະທຳອິດຖືກຫຸ້ມໄວ້ໃນຊັ້ນໄຂ່ແລະກິນນໍ້າຈາກຕົວອ່ອນ. ຈາກໄລຍະທີສອງເຖິງໄລຍະທີຫ້າ (prepupa), ເຜິ້ງຈະກິນເກສອນດອກໄມ້22. ເມື່ອປະລິມານເກສອນດອກໄມ້ໝົດໄປໝົດ, ເຜິ້ງຈະສ້າງຮັງ, ເປັນດັກແດ້ແລະອອກມາເປັນຕົວເຕັມໄວໃນຫ້ອງໄຂ່ລູກດຽວກັນ, ໂດຍປົກກະຕິແລ້ວໃນທ້າຍລະດູຮ້ອນ20,23. ຕົວເຕັມໄວຈະອອກມາໃນລະດູໃບໄມ້ປົ່ງຕໍ່ໄປ. ການຢູ່ລອດຂອງໂຕເຕັມໄວແມ່ນກ່ຽວຂ້ອງກັບການເພີ່ມພະລັງງານສຸດທິ (ການເພີ່ມນໍ້າໜັກ) ໂດຍອີງໃສ່ການໄດ້ຮັບອາຫານ. ດັ່ງນັ້ນ, ຄຸນນະພາບທາງໂພຊະນາການຂອງເກສອນດອກໄມ້, ເຊັ່ນດຽວກັນກັບປັດໃຈອື່ນໆເຊັ່ນ: ສະພາບອາກາດ ຫຼື ການສຳຜັດກັບຢາປາບສັດຕູພືດ, ເປັນຕົວກຳນົດການຢູ່ລອດແລະສຸຂະພາບ24.
ຢາຂ້າແມງໄມ້ ແລະ ຢາຂ້າເຊື້ອຣາທີ່ໃຊ້ກ່ອນອອກດອກສາມາດເຄື່ອນຍ້າຍພາຍໃນເສັ້ນເລືອດຂອງພືດໄດ້ຫຼາຍລະດັບ, ຕັ້ງແຕ່ translaminar (ເຊັ່ນ: ສາມາດເຄື່ອນຍ້າຍຈາກໜ້າຜິວດ້ານເທິງຂອງໃບໄປຫາໜ້າຜິວດ້ານລຸ່ມ, ຄືກັບຢາຂ້າເຊື້ອຣາບາງຊະນິດ) 25 ຈົນເຖິງຜົນກະທົບທາງລະບົບຢ່າງແທ້ຈິງ. , ເຊິ່ງສາມາດເຈາະເຂົ້າໄປໃນເຮືອນຍອດຈາກຮາກ, ສາມາດເຂົ້າໄປໃນນ້ຳຫວານຂອງດອກໝາກໂປມ26, ບ່ອນທີ່ພວກມັນສາມາດຂ້າຕົວອ່ອນ O. cornifrons27. ຢາຂ້າແມງໄມ້ບາງຊະນິດຍັງຊຶມເຂົ້າໄປໃນເກສອນດອກໄມ້, ສົ່ງຜົນກະທົບຕໍ່ການພັດທະນາຂອງຕົວອ່ອນສາລີ ແລະ ເຮັດໃຫ້ພວກມັນຕາຍ19. ການສຶກສາອື່ນໆໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າຢາຂ້າເຊື້ອຣາບາງຊະນິດສາມາດປ່ຽນແປງພຶດຕິກຳການວາງໄຂ່ຂອງຊະນິດພັນທີ່ກ່ຽວຂ້ອງ O. lignaria28 ຢ່າງຫຼວງຫຼາຍ. ນອກຈາກນັ້ນ, ການສຶກສາໃນຫ້ອງທົດລອງ ແລະ ພາກສະໜາມທີ່ຈຳລອງສະຖານະການການສຳຜັດກັບຢາຂ້າແມງໄມ້ (ລວມທັງຢາຂ້າແມງໄມ້) ໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າຢາຂ້າແມງໄມ້ສົ່ງຜົນກະທົບທາງລົບຕໍ່ສະລີລະວິທະຍາ22 ຮູບຮ່າງ29 ແລະ ການຢູ່ລອດຂອງເຜິ້ງນໍ້າເຜິ້ງ ແລະ ເຜິ້ງດ່ຽວບາງຊະນິດ. ການສີດພົ່ນຢາຂ້າເຊື້ອຣາຫຼາຍຊະນິດທີ່ໃຊ້ໂດຍກົງກັບດອກໄມ້ທີ່ເປີດໃນລະຫວ່າງການອອກດອກອາດຈະປົນເປື້ອນເກສອນດອກໄມ້ທີ່ເກັບໂດຍຜູ້ໃຫຍ່ເພື່ອການພັດທະນາຂອງຕົວອ່ອນ, ຜົນກະທົບຂອງມັນຍັງຄົງຕ້ອງໄດ້ສຶກສາ30.
ມັນເປັນທີ່ຮັບຮູ້ເພີ່ມຂຶ້ນວ່າການພັດທະນາຂອງຕົວອ່ອນແມ່ນໄດ້ຮັບອິດທິພົນຈາກເກສອນດອກໄມ້ ແລະ ຊຸມຊົນຈຸລິນຊີຂອງລະບົບຍ່ອຍອາຫານ. ຈຸລິນຊີຂອງເຜິ້ງນໍ້າເຜິ້ງມີອິດທິພົນຕໍ່ຕົວກໍານົດຕ່າງໆເຊັ່ນ: ມວນຮ່າງກາຍ31, ການປ່ຽນແປງທາງເດີນອາຫານ22 ແລະ ຄວາມອ່ອນໄຫວຕໍ່ເຊື້ອພະຍາດ32. ການສຶກສາກ່ອນໜ້ານີ້ໄດ້ກວດສອບອິດທິພົນຂອງໄລຍະການພັດທະນາ, ສານອາຫານ ແລະ ສິ່ງແວດລ້ອມຕໍ່ຈຸລິນຊີຂອງເຜິ້ງດ່ຽວ. ການສຶກສາເຫຼົ່ານີ້ໄດ້ເປີດເຜີຍຄວາມຄ້າຍຄືກັນໃນໂຄງສ້າງ ແລະ ຄວາມອຸດົມສົມບູນຂອງຈຸລິນຊີຂອງຕົວອ່ອນ ແລະ ເກສອນດອກໄມ້33, ເຊັ່ນດຽວກັນກັບເຊື້ອແບັກທີເຣຍທີ່ພົບເລື້ອຍທີ່ສຸດຄື Pseudomonas ແລະ Delftia, ໃນບັນດາຊະນິດເຜິ້ງດ່ຽວ. ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ເຖິງແມ່ນວ່າຢາຂ້າເຊື້ອລາໄດ້ຖືກພົວພັນກັບຍຸດທະສາດເພື່ອປົກປ້ອງສຸຂະພາບຂອງເຜິ້ງ, ແຕ່ຜົນກະທົບຂອງຢາຂ້າເຊື້ອລາຕໍ່ຈຸລິນຊີຂອງຕົວອ່ອນໂດຍຜ່ານການສຳຜັດທາງປາກໂດຍກົງຍັງບໍ່ທັນໄດ້ຮັບການສຳຫຼວດ.
ການສຶກສານີ້ໄດ້ທົດສອບຜົນກະທົບຂອງຢາຂ້າເຊື້ອລາຫົກຊະນິດທີ່ໃຊ້ທົ່ວໄປໃນໂລກຕົວຈິງທີ່ລົງທະບຽນສຳລັບການນຳໃຊ້ກັບໝາກໄມ້ໃນສະຫະລັດອາເມລິກາ, ລວມທັງຢາຂ້າເຊື້ອລາແບບສຳຜັດ ແລະ ຢາຂ້າເຊື້ອລາທົ່ວຮ່າງກາຍທີ່ໃຫ້ທາງປາກກັບຕົວອ່ອນແມງເມົາຈາກອາຫານທີ່ປົນເປື້ອນ. ພວກເຮົາພົບວ່າຢາຂ້າເຊື້ອລາແບບສຳຜັດ ແລະ ຢາຂ້າເຊື້ອລາທົ່ວຮ່າງກາຍຊ່ວຍຫຼຸດຜ່ອນການເພີ່ມນ້ຳໜັກຂອງເຜິ້ງ ແລະ ເພີ່ມອັດຕາການຕາຍ, ໂດຍມີຜົນກະທົບຮ້າຍແຮງທີ່ສຸດທີ່ກ່ຽວຂ້ອງກັບ mancozeb ແລະ pyrithiopide. ຫຼັງຈາກນັ້ນ, ພວກເຮົາໄດ້ປຽບທຽບຄວາມຫຼາກຫຼາຍຂອງຈຸລິນຊີຂອງຕົວອ່ອນທີ່ກິນໃນອາຫານທີ່ມີເກສອນດອກໄມ້ mancozeb ກັບອາຫານທີ່ກິນໃນອາຫານຄວບຄຸມ. ພວກເຮົາສົນທະນາກ່ຽວກັບກົນໄກທີ່ອາດຈະເກີດຂຶ້ນທີ່ຢູ່ເບື້ອງຫຼັງການຕາຍ ແລະ ຜົນສະທ້ອນຕໍ່ໂຄງການຄຸ້ມຄອງສັດຕູພືດ ແລະ ເກສອນດອກໄມ້ແບບປະສົມປະສານ (IPPM)36.
ຮັງເຜິ້ງ O. cornifrons ໂຕເຕັມໄວທີ່ອາໄສຢູ່ໃນຮັງເຜິ້ງໄດ້ມາຈາກສູນຄົ້ນຄວ້າໝາກໄມ້, Biglerville, PA, ແລະເກັບຮັກສາໄວ້ທີ່ອຸນຫະພູມ -3 ຫາ 2°C (±0.3°C). ກ່ອນການທົດລອງ (ຮັງເຜິ້ງທັງໝົດ 600 ຮັງ). ໃນເດືອນພຶດສະພາ 2022, ຮັງເຜິ້ງ O. cornifrons 100 ຮັງໄດ້ຖືກຍ້າຍໃສ່ຈອກພລາສຕິກທຸກໆມື້ (ຮັງເຜິ້ງ 50 ຮັງຕໍ່ຈອກ, ຂະໜາດ DI 5 ຊມ × 15 ຊມ) ແລະຜ້າເຊັດຖືກວາງໄວ້ພາຍໃນຈອກເພື່ອສົ່ງເສີມການເປີດ ແລະ ສະໜອງຊັ້ນຮອງທີ່ສາມາດຄ້ຽວໄດ້, ຫຼຸດຜ່ອນຄວາມກົດດັນຕໍ່ຜຶ້ງຫີນ37. ວາງຈອກພລາສຕິກສອງຈອກທີ່ມີຮັງເຜິ້ງໄວ້ໃນກະຕ່າແມງໄມ້ (30 × 30 × 30 ຊມ, BugDorm MegaView Science Co. Ltd., ໄຕ້ຫວັນ) ດ້ວຍອາຫານ 10 ມລ ທີ່ມີສານລະລາຍນ້ຳຕານຊູໂຄສ 50% ແລະເກັບຮັກສາໄວ້ເປັນເວລາສີ່ມື້ເພື່ອຮັບປະກັນການປິດ ແລະ ການຫາຄູ່. 23°C, ຄວາມຊຸ່ມຊື່ນສຳພັດ 60%, ໄລຍະເວລາແສງ 10 ລິດ (ຄວາມເຂັ້ມຕ່ຳ): 14 ມື້. ນົກເພດແມ່ ແລະ ເພດຜູ້ 100 ໂຕທີ່ຫາຄູ່ໄດ້ຖືກປ່ອຍອອກທຸກໆເຊົ້າເປັນເວລາຫົກມື້ (100 ໂຕຕໍ່ມື້) ເຂົ້າໄປໃນຮັງທຽມສອງຮັງໃນຊ່ວງເວລາອອກດອກສູງສຸດຂອງໝາກແອັບເປິ້ນ (ຮັງກັບດັກ: ກວ້າງ 33.66 × ສູງ 30.48 × ຍາວ 46.99 ຊມ; ຮູບເສີມ 1). ວາງໄວ້ທີ່ສວນພຶກສາສາດລັດເພນຊິນເວເນຍ, ໃກ້ກັບຕົ້ນໝາກເຊີຣີ (Prunus cerasus 'Eubank' Sweet Cherry Pie™), ຕົ້ນໝາກພ້າວ (Prunus persica 'Contender'), ຕົ້ນ Prunus persica 'PF 27A' Flamin Fury®), ຕົ້ນໝາກແພ (Pyrus perifolia 'Olympic', Pyrus perifolia 'Shinko', Pyrus perifolia 'Shinseiki'), ຕົ້ນໝາກແອັບເປິ້ນ coronaria (Malus coronaria) ແລະ ຕົ້ນໝາກແອັບເປິ້ນຫຼາຍຊະນິດ (Malus coronaria, Malus), ຕົ້ນໝາກແອັບເປິ້ນພາຍໃນປະເທດ 'Co-op 30′ Enterprise™, ຕົ້ນໝາກແອັບເປິ້ນ Malus 'Co-Op 31′ Winecrisp™, ຕົ້ນບີໂກເນຍ 'Freedom', ຕົ້ນບີໂກເນຍ 'Golden Delicious', ຕົ້ນບີໂກເນຍ 'Nova Spy'). ເຮືອນນົກພາດສະຕິກສີຟ້າແຕ່ລະອັນສາມາດວາງໄວ້ເທິງກ່ອງໄມ້ສອງອັນ. ກ່ອງຮັງແຕ່ລະອັນມີທໍ່ເຈ້ຍ kraft ເປົ່າ 800 ທໍ່ (ເປີດເປັນຮູບກ້ຽວ, ຂະໜາດ 0.8 ຊມ × ລວງຍາວ 15 ຊມ) (ບໍລິສັດ Jonesville Paper Tube Co., Michigan) ທີ່ສຽບເຂົ້າໄປໃນທໍ່ cellophane ທີ່ມີຄວາມທຶບທึບ (0.7 OD ເບິ່ງປລັກພາດສະຕິກ (ປລັກ T-1X) ເປັນບ່ອນເຮັດຮັງ.
ກ່ອງຮັງທັງສອງຫັນໜ້າໄປທາງທິດຕາເວັນອອກ ແລະ ຖືກປົກຄຸມດ້ວຍຮົ້ວສວນພາດສະຕິກສີຂຽວ (ຮຸ່ນ Everbilt #889250EB12, ຂະໜາດເປີດ 5 × 5 ຊມ, 0.95 ມ × 100 ມ) ເພື່ອປ້ອງກັນການເຂົ້າຂອງໜູ ແລະ ນົກ ແລະ ວາງໄວ້ເທິງໜ້າດິນຖັດຈາກກ່ອງດິນຂອງກ່ອງຮັງ. ກ່ອງຮັງ (ຮູບເສີມ 1a). ໄຂ່ໜອນເຈາະສາລີໄດ້ຖືກເກັບກຳທຸກໆມື້ໂດຍການເກັບ 30 ທໍ່ຈາກຮັງ ແລະ ຂົນສົ່ງພວກມັນໄປຫ້ອງທົດລອງ. ໂດຍໃຊ້ມີດຕັດ, ຕັດປາຍທໍ່, ຈາກນັ້ນຖອດທໍ່ກ້ຽວອອກເພື່ອເປີດເຜີຍຈຸລັງໄຂ່. ໄຂ່ແຕ່ລະໜ່ວຍ ແລະ ເກສອນຂອງມັນໄດ້ຖືກເອົາອອກໂດຍໃຊ້ບ່ວງໂຄ້ງ (ຊຸດເຄື່ອງມື Microslide, BioQuip Products Inc., California). ໄຂ່ໄດ້ຖືກຟັກໃສ່ເຈ້ຍກອງທີ່ຊຸ່ມ ແລະ ວາງໄວ້ໃນຈານ Petri ເປັນເວລາ 2 ຊົ່ວໂມງກ່ອນທີ່ຈະນຳໃຊ້ໃນການທົດລອງຂອງພວກເຮົາ (ຮູບເສີມ 1b-d).
ໃນຫ້ອງທົດລອງ, ພວກເຮົາໄດ້ປະເມີນຄວາມເປັນພິດທາງປາກຂອງຢາຂ້າເຊື້ອລາຫົກຊະນິດທີ່ໃຊ້ກ່ອນ ແລະ ໃນລະຫວ່າງການອອກດອກຂອງໝາກໂປມໃນຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນສາມຢ່າງ (0.1X, 0.5X, ແລະ 1X, ບ່ອນທີ່ 1X ແມ່ນເຄື່ອງໝາຍທີ່ໃຊ້ຕໍ່ນ້ຳ 100 ກາລອນ/ເອເຄີ. ປະລິມານນ້ຳໃນທົ່ງນາສູງ = ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນໃນທົ່ງນາ). , ຕາຕະລາງທີ 1). ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນແຕ່ລະຄັ້ງໄດ້ຖືກເຮັດຊ້ຳອີກ 16 ເທື່ອ (n = 16). ຢາຂ້າເຊື້ອລາສອງຊະນິດຕິດຕໍ່ (ຕາຕະລາງ S1: mancozeb 2696.14 ppm ແລະ captan 2875.88 ppm) ແລະ ຢາຂ້າເຊື້ອລາລະບົບສີ່ຊະນິດ (ຕາຕະລາງ S1: pyrithiostrobin 250.14 ppm; trifloxystrobin 110.06 ppm; myclobutanil azole 75.12 ppm; cyprodinil 280.845 ppm) ຄວາມເປັນພິດຕໍ່ໝາກໄມ້, ຜັກ ແລະ ພືດປະດັບ. ພວກເຮົາໄດ້ເຮັດໃຫ້ເກສອນດອກໄມ້ເປັນເອກະພາບໂດຍໃຊ້ເຄື່ອງບົດ, ຍ້າຍ 0.20 g ໃສ່ບໍ່ (ແຜ່ນ Falcon 24 ຫຼຸມ), ແລະ ຕື່ມ ແລະ ປະສົມນ້ຳຢາຂ້າເຊື້ອລາ 1 μL ເພື່ອສ້າງເກສອນດອກໄມ້ຮູບຊົງພີຣາມິດທີ່ມີບໍ່ເລິກ 1 ມມ ບ່ອນທີ່ວາງໄຂ່ໄວ້. ວາງໂດຍໃຊ້ບ່ວງນ້ອຍ (ຮູບເສີມ 1c,d). ແຜ່ນ Falcon ຖືກເກັບຮັກສາໄວ້ທີ່ອຸນຫະພູມຫ້ອງ (25°C) ແລະ ຄວາມຊຸ່ມຊື່ນສຳພັດ 70%. ພວກເຮົາໄດ້ປຽບທຽບພວກມັນກັບຕົວອ່ອນຄວບຄຸມທີ່ກິນອາຫານເກສອນດອກໄມ້ທີ່ເປັນເອກະພາບທີ່ບຳບັດດ້ວຍນ້ຳບໍລິສຸດ. ພວກເຮົາໄດ້ບັນທຶກການຕາຍ ແລະ ວັດແທກນ້ຳໜັກຕົວອ່ອນທຸກໆມື້ຈົນກວ່າຕົວອ່ອນຈະຮອດອາຍຸກ່ອນໄວອັນຄວນໂດຍໃຊ້ເຄື່ອງຊັ່ງວິເຄາະ (Fisher Scientific, ຄວາມຖືກຕ້ອງ = 0.0001 g). ສຸດທ້າຍ, ອັດຕາສ່ວນເພດໄດ້ຖືກປະເມີນໂດຍການເປີດຮັງເຜິ້ງຫຼັງຈາກ 2.5 ເດືອນ.
DNA ໄດ້ຖືກສະກັດຈາກຕົວອ່ອນ O. cornifrons ທັງໝົດ (n = 3 ຕໍ່ເງື່ອນໄຂການປິ່ນປົວ, ທີ່ໄດ້ຮັບ mancozeb ແລະບໍ່ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວເກສອນ) ແລະພວກເຮົາໄດ້ດຳເນີນການວິເຄາະຄວາມຫຼາກຫຼາຍຂອງຈຸລິນຊີໃນຕົວຢ່າງເຫຼົ່ານີ້, ໂດຍສະເພາະຍ້ອນວ່າໃນ mancozeb ອັດຕາການຕາຍສູງສຸດໄດ້ຖືກສັງເກດເຫັນໃນຕົວອ່ອນ. ທີ່ໄດ້ຮັບ MnZn. DNA ໄດ້ຖືກຂະຫຍາຍ, ເຮັດໃຫ້ບໍລິສຸດໂດຍໃຊ້ຊຸດ DNAZymoBIOMICS®-96 MagBead DNA (Zymo Research, Irvine, CA), ແລະຈັດລຳດັບ (600 ຮອບວຽນ) ໃນ Illumina® MiSeq™ ໂດຍໃຊ້ຊຸດ v3. ການຈັດລຳດັບເປົ້າໝາຍຂອງເຊື້ອ RNA ribosomal 16S ຂອງເຊື້ອແບັກທີເຣຍໄດ້ຖືກປະຕິບັດໂດຍໃຊ້ຊຸດກຽມຫ້ອງສະໝຸດ Quick-16S™ NGS (Zymo Research, Irvine, CA) ໂດຍໃຊ້ໄພຣເມີທີ່ແນໃສ່ພາກພື້ນ V3-V4 ຂອງເຊື້ອ rRNA 16S. ນອກຈາກນັ້ນ, ການຈັດລຳດັບ 18S ໄດ້ຖືກປະຕິບັດໂດຍໃຊ້ການລວມ PhiX 10%, ແລະການຂະຫຍາຍໄດ້ຖືກປະຕິບັດໂດຍໃຊ້ຄູ່ໄພຣເມີ 18S001 ແລະ NS4.
ນຳເຂົ້າ ແລະ ປະມວນຜົນການອ່ານທີ່ຈັບຄູ່ແລ້ວ39 ໂດຍໃຊ້ Pipeline QIIME2 (v2022.11.1). ການອ່ານເຫຼົ່ານີ້ໄດ້ຖືກຕັດ ແລະ ລວມເຂົ້າກັນ, ແລະ ລຳດັບ chimeric ໄດ້ຖືກລຶບອອກໂດຍໃຊ້ plugin DADA2 ໃນ QIIME2 (qiime dada2 noise pairing)40. ການມອບໝາຍຫ້ອງຮຽນ 16S ແລະ 18S ໄດ້ຖືກປະຕິບັດໂດຍໃຊ້ plugin classifier object Classify-sklearn ແລະ artifact silva-138-99-nb-classifier ທີ່ໄດ້ຮັບການຝຶກອົບຮົມລ່ວງໜ້າ.
ຂໍ້ມູນການທົດລອງທັງໝົດໄດ້ຖືກກວດສອບຄວາມເປັນປົກກະຕິ (Shapiro-Wilks) ແລະ ຄວາມສອດຄ່ອງຂອງຄວາມແຕກຕ່າງ (ການທົດສອບຂອງ Levene). ເນື່ອງຈາກຊຸດຂໍ້ມູນບໍ່ຕອບສະໜອງສົມມຸດຕິຖານຂອງການວິເຄາະພາລາມິເຕີ ແລະ ການຫັນປ່ຽນບໍ່ສາມາດມາດຕະຖານສ່ວນທີ່ເຫຼືອໄດ້, ພວກເຮົາໄດ້ປະຕິບັດ ANOVA ສອງທາງທີ່ບໍ່ແມ່ນພາລາມິເຕີ (Kruskal-Wallis) ດ້ວຍສອງປັດໃຈ [ເວລາ (ສາມໄລຍະ 2, 5, ແລະ 8 ຈຸດເວລາມື້) ແລະ ຢາຂ້າເຊື້ອລາ] ເພື່ອປະເມີນຜົນກະທົບຂອງການປິ່ນປົວຕໍ່ນ້ຳໜັກສົດຂອງຕົວອ່ອນ, ຫຼັງຈາກນັ້ນການປຽບທຽບຄູ່ທີ່ບໍ່ແມ່ນພາລາມິເຕີຫຼັງການທົດລອງໄດ້ຖືກປະຕິບັດໂດຍໃຊ້ການທົດສອບ Wilcoxon. ພວກເຮົາໄດ້ໃຊ້ຮູບແບບເສັ້ນຊື່ທົ່ວໄປ (GLM) ທີ່ມີການແຈກຢາຍ Poisson ເພື່ອປຽບທຽບຜົນກະທົບຂອງຢາຂ້າເຊື້ອລາຕໍ່ການຢູ່ລອດໃນທົ່ວຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງຢາຂ້າເຊື້ອລາສາມຊະນິດ41,42. ສຳລັບການວິເຄາະຄວາມອຸດົມສົມບູນທີ່ແຕກຕ່າງກັນ, ຈຳນວນຂອງຕົວແປລຳດັບແອມພລິຄອນ (ASVs) ໄດ້ຖືກລວມຢູ່ໃນລະດັບສະກຸນ. ການປຽບທຽບຄວາມອຸດົມສົມບູນທີ່ແຕກຕ່າງກັນລະຫວ່າງກຸ່ມໂດຍໃຊ້ 16S (ລະດັບສະກຸນ) ແລະ ຄວາມອຸດົມສົມບູນທຽບເທົ່າ 18S ໄດ້ຖືກປະຕິບັດໂດຍໃຊ້ຮູບແບບເພີ່ມເຕີມທົ່ວໄປສຳລັບຕຳແໜ່ງ, ຂະໜາດ, ແລະຮູບຮ່າງ (GAMLSS) ດ້ວຍການແຈກຢາຍຄອບຄົວ beta zero-inflated (BEZI), ເຊິ່ງໄດ້ຖືກສ້າງແບບຈຳລອງໃນມະຫາພາກ . ໃນ Microbiome R43 (v1.1). 1). ກຳຈັດຊະນິດ mitochondrial ແລະ chloroplast ກ່ອນການວິເຄາະແບບດິບເຟີເຣນຊຽລ. ເນື່ອງຈາກລະດັບ taxonomic ທີ່ແຕກຕ່າງກັນຂອງ 18S, ມີພຽງແຕ່ລະດັບຕໍ່າສຸດຂອງແຕ່ລະ taxonomic ເທົ່ານັ້ນທີ່ຖືກນໍາໃຊ້ສໍາລັບການວິເຄາະແບບດິບເຟີເຣນຊຽລ. ການວິເຄາະທາງສະຖິຕິທັງໝົດໄດ້ຖືກປະຕິບັດໂດຍໃຊ້ R (v. 3.4.3., ໂຄງການ CRAN) (ທີມ 2013).
ການໄດ້ຮັບຢາ mancozeb, pyrithiostrobin, ແລະ trifloxystrobin ຊ່ວຍຫຼຸດຜ່ອນການເພີ່ມນ້ຳໜັກຕົວໃນ O. cornifrons ຢ່າງຫຼວງຫຼາຍ (ຮູບທີ 1). ຜົນກະທົບເຫຼົ່ານີ້ໄດ້ຖືກສັງເກດເຫັນຢ່າງຕໍ່ເນື່ອງສຳລັບທັງສາມຄັ້ງທີ່ໄດ້ຮັບການປະເມີນ (ຮູບທີ 1a–c). Cyclostrobin ແລະ myclobutanil ບໍ່ໄດ້ຫຼຸດຜ່ອນນ້ຳໜັກຂອງຕົວອ່ອນຢ່າງຫຼວງຫຼາຍ.
ນ້ຳໜັກສົດສະເລ່ຍຂອງຕົວອ່ອນເຈາະລຳຕົ້ນວັດແທກຢູ່ສາມຈຸດເວລາພາຍໃຕ້ການປິ່ນປົວອາຫານສີ່ຄັ້ງ (ອາຫານປະສົມເກສອນດອກໄມ້ + ຢາຂ້າເຊື້ອລາທີ່ເປັນເອກະພາບ: ກຸ່ມຄວບຄຸມ, ປະລິມານຢາ 0.1X, 0.5X ແລະ 1X). (ກ) ປະລິມານຢາຕໍ່າ (0.1X): ຈຸດເວລາທຳອິດ (ມື້ທີ 1): χ2: 30.99, DF = 6; P < 0.0001, ຈຸດເວລາທີສອງ (ມື້ທີ 5): 22.83, DF = 0.0009; ຈຸດເວລາທີສາມ; ຈຸດເວລາ (ມື້ທີ 8): χ2: 28.39, DF = 6; (ຂ) ປະລິມານຢາເຄິ່ງໜຶ່ງ (0.5X): ຈຸດເວລາທຳອິດ (ມື້ທີ 1): χ2: 35.67, DF = 6; P < 0.0001, ຈຸດເວລາທີສອງ (ມື້ທີໜຶ່ງ). ): χ2: 15.98, DF = 6; P = 0.0090; ຈຸດເວລາທີສາມ (ມື້ທີ 8) χ2: 16.47, DF = 6; (c) ສະຖານທີ່ ຫຼື ປະລິມານຢາເຕັມທີ່ (1X): ຈຸດເວລາທຳອິດ (ມື້ທີ 1) χ2: 20.64, P = 6; P = 0.0326, ຈຸດເວລາທີສອງ (ມື້ທີ 5): χ2: 22.83, DF = 6; P = 0.0009; ຈຸດເວລາທີສາມ (ມື້ທີ 8): χ2: 28.39, DF = 6; ການວິເຄາະຄວາມແปรປ່ວນທີ່ບໍ່ແມ່ນພາລາມິເຕີ. ແຖບສະແດງເຖິງຄ່າສະເລ່ຍ ± SE ຂອງການປຽບທຽບຄູ່ (α = 0.05) (n = 16) *P ≤ 0.05, **P ≤ 0.001, ***P ≤ 0.0001.
ໃນປະລິມານຕໍ່າສຸດ (0.1X), ນ້ຳໜັກຕົວຂອງຕົວອ່ອນຫຼຸດລົງ 60% ດ້ວຍຢາ trifloxystrobin, 49% ດ້ວຍຢາ mancozeb, 48% ດ້ວຍຢາ myclobutanil, ແລະ 46% ດ້ວຍຢາ pyrithistrobin (ຮູບທີ 1a). ເມື່ອໄດ້ຮັບຢາເຄິ່ງໜຶ່ງຂອງປະລິມານຢາໃນສະໜາມ (0.5X), ນ້ຳໜັກຕົວຂອງຕົວອ່ອນ mancozeb ຫຼຸດລົງ 86%, ຢາ pyrithiostrobin ຫຼຸດລົງ 52% ແລະ ຢາ trifloxystrobin ຫຼຸດລົງ 50% (ຮູບທີ 1b). ການໃຫ້ຢາ mancozeb ໃນປະລິມານເຕັມທີ່ (1X) ໃນສະໜາມຊ່ວຍຫຼຸດນ້ຳໜັກຕົວອ່ອນລົງ 82%, ຢາ pyrithiostrobin ຫຼຸດລົງ 70%, ແລະ ຢາ trifloxystrobin, myclobutanil ແລະ sangard ຫຼຸດລົງປະມານ 30% (ຮູບທີ 1c).
ອັດຕາການຕາຍສູງທີ່ສຸດໃນກຸ່ມຕົວອ່ອນທີ່ໄດ້ຮັບເກສອນພືດທີ່ໄດ້ຮັບ mancozeb, ຮອງລົງມາແມ່ນ pyrithiostrobin ແລະ trifloxystrobin. ອັດຕາການຕາຍເພີ່ມຂຶ້ນເມື່ອປະລິມານຢາ mancozeb ແລະ pyritisoline ເພີ່ມຂຶ້ນ (ຮູບທີ 2; ຕາຕະລາງທີ 2). ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ອັດຕາການຕາຍຂອງໜອນເຈາະສາລີເພີ່ມຂຶ້ນພຽງເລັກນ້ອຍເມື່ອຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງ trifloxystrobin ເພີ່ມຂຶ້ນ; cyprodinil ແລະ captan ບໍ່ໄດ້ເພີ່ມອັດຕາການຕາຍຢ່າງຫຼວງຫຼາຍເມື່ອທຽບກັບການປິ່ນປົວກຸ່ມຄວບຄຸມ.
ການຕາຍຂອງຕົວອ່ອນແມງວັນເຈາະໄດ້ຖືກປຽບທຽບຫຼັງຈາກການກິນເກສອນດອກໄມ້ທີ່ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວດ້ວຍຢາຂ້າເຊື້ອລາຫົກຊະນິດທີ່ແຕກຕ່າງກັນ. Mancozeb ແລະ pentopyramide ມີຄວາມອ່ອນໄຫວຫຼາຍກວ່າຕໍ່ການສຳຜັດກັບໜອນສາລີທາງປາກ (GLM: χ = 29.45, DF = 20, P = 0.0059) (ເສັ້ນ, ຄວາມຊັນ = 0.29, P < 0.001; ຄວາມຊັນ = 0.24, P <0.00)).
ໂດຍສະເລ່ຍແລ້ວ, ໃນການປິ່ນປົວທັງໝົດ, 39.05% ຂອງຄົນເຈັບແມ່ນເພດຍິງ ແລະ 60.95% ແມ່ນເພດຊາຍ. ໃນບັນດາການປິ່ນປົວຄວບຄຸມ, ອັດຕາສ່ວນຂອງແມ່ຍິງແມ່ນ 40% ໃນທັງການສຶກສາໃນປະລິມານຕໍ່າ (0.1X) ແລະ ເຄິ່ງປະລິມານ (0.5X), ແລະ 30% ໃນການສຶກສາໃນປະລິມານພາກສະໜາມ (1X). ໃນປະລິມານ 0.1X, ໃນບັນດາຕົວອ່ອນທີ່ລ້ຽງເກສອນດອກໄມ້ທີ່ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວດ້ວຍ mancozeb ແລະ myclobutanil, 33.33% ຂອງຜູ້ໃຫຍ່ແມ່ນເພດຍິງ, 22% ຂອງຜູ້ໃຫຍ່ແມ່ນເພດຍິງ, 44% ຂອງຕົວອ່ອນຜູ້ໃຫຍ່ແມ່ນເພດຍິງ, 44% ຂອງຕົວອ່ອນຜູ້ໃຫຍ່ແມ່ນເພດຍິງ. ຕົວອ່ອນຜູ້ໃຫຍ່ແມ່ນເພດຍິງ, 41% ຂອງຕົວອ່ອນຜູ້ໃຫຍ່ແມ່ນເພດຍິງ, ແລະ ກຸ່ມຄວບຄຸມແມ່ນ 31% (ຮູບທີ 3a). ໃນປະລິມານຢາ 0.5 ເທົ່າ, 33% ຂອງແມ່ທ້ອງໂຕເຕັມໄວໃນກຸ່ມ mancozeb ແລະ pyrithiostrobin ແມ່ນເພດຍິງ, 36% ໃນກຸ່ມ trifloxystrobin, 41% ໃນກຸ່ມ myclobutanil, ແລະ 46% ໃນກຸ່ມ cyprostrobin. ຕົວເລກນີ້ແມ່ນ 53% ໃນກຸ່ມ. ໃນກຸ່ມ captan ແລະ 38% ໃນກຸ່ມຄວບຄຸມ (ຮູບທີ 3b). ໃນປະລິມານຢາ 1 ເທົ່າ, 30% ຂອງກຸ່ມ mancozeb ແມ່ນແມ່ຍິງ, 36% ຂອງກຸ່ມ pyrithiostrobin, 44% ຂອງກຸ່ມ trifloxystrobin, 38% ຂອງກຸ່ມ myclobutanil, 50% ຂອງກຸ່ມຄວບຄຸມແມ່ນແມ່ຍິງ - 38.5% (ຮູບທີ 3c).
ອັດຕາສ່ວນຂອງແມງໄມ້ເຈາະເພດແມ່ ແລະ ເພດຜູ້ ຫຼັງຈາກໄດ້ຮັບຢາຂ້າເຊື້ອລາໃນໄລຍະຕົວອ່ອນ. (ກ) ປະລິມານຢາຕໍ່າ (0.1X). (ຂ) ປະລິມານຢາເຄິ່ງໜຶ່ງ (0.5X). (ຄ) ປະລິມານຢາໃນສະໜາມ ຫຼື ປະລິມານຢາເຕັມທີ່ (1X).
ການວິເຄາະລຳດັບ 16S ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າກຸ່ມເຊື້ອແບັກທີເຣຍແຕກຕ່າງກັນລະຫວ່າງຕົວອ່ອນທີ່ກິນເກສອນພືດທີ່ຮັກສາດ້ວຍ mancozeb ແລະຕົວອ່ອນທີ່ກິນເກສອນພືດທີ່ຮັກສາດ້ວຍ mancozeb (ຮູບທີ 4a). ດັດຊະນີຈຸລິນຊີຂອງຕົວອ່ອນທີ່ຮັກສາດ້ວຍເກສອນພືດສູງກວ່າຕົວອ່ອນທີ່ກິນເກສອນພືດທີ່ຮັກສາດ້ວຍ mancozeb (ຮູບທີ 4b). ເຖິງແມ່ນວ່າຄວາມແຕກຕ່າງທີ່ສັງເກດເຫັນໃນຄວາມອຸດົມສົມບູນລະຫວ່າງກຸ່ມບໍ່ມີຄວາມໝາຍທາງສະຖິຕິ, ແຕ່ມັນຕໍ່າກວ່າທີ່ສັງເກດເຫັນສຳລັບຕົວອ່ອນທີ່ກິນເກສອນພືດທີ່ຮັກສາດ້ວຍ mancozeb (ຮູບທີ 4c). ຄວາມອຸດົມສົມບູນທຽບເທົ່າສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າຈຸລິນຊີຂອງຕົວອ່ອນທີ່ກິນເກສອນພືດຄວບຄຸມມີຄວາມຫຼາກຫຼາຍຫຼາຍກ່ວາຕົວອ່ອນທີ່ກິນເກສອນພືດທີ່ຮັກສາດ້ວຍ mancozeb (ຮູບທີ 5a). ການວິເຄາະພັນລະນາເປີດເຜີຍວ່າມີ 28 ສະກຸນໃນຕົວຢ່າງຄວບຄຸມ ແລະ ຕົວຢ່າງທີ່ຮັກສາດ້ວຍ mancozeb (ຮູບທີ 5b). ການວິເຄາະ c ໂດຍໃຊ້ລຳດັບ 18S ເປີດເຜີຍບໍ່ມີຄວາມແຕກຕ່າງທີ່ສຳຄັນ (ຮູບເພີ່ມເຕີມ 2).
ໂປຣໄຟລ໌ SAV ໂດຍອີງໃສ່ລຳດັບ 16S ໄດ້ຖືກປຽບທຽບກັບຄວາມອຸດົມສົມບູນຂອງ Shannon ແລະ ສັງເກດເຫັນຄວາມອຸດົມສົມບູນຢູ່ໃນລະດັບ phylum. (a) ການວິເຄາະພິກັດຫຼັກ (PCoA) ໂດຍອີງໃສ່ໂຄງສ້າງຊຸມຊົນຈຸລິນຊີໂດຍລວມໃນຕົວອ່ອນທີ່ກິນອາຫານເກສອນດອກໄມ້ ຫຼື ຕົວຄວບຄຸມທີ່ບໍ່ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວ (ສີຟ້າ) ແລະ ຕົວອ່ອນທີ່ກິນອາຫານ mancozeb (ສີສົ້ມ). ແຕ່ລະຈຸດຂໍ້ມູນສະແດງເຖິງຕົວຢ່າງແຍກຕ່າງຫາກ. PCoA ໄດ້ຖືກຄິດໄລ່ໂດຍໃຊ້ໄລຍະຫ່າງ Bray-Curtis ຂອງການແຈກຢາຍ t ຫຼາຍຕົວແປ. ຮູບວົງຣີສະແດງເຖິງລະດັບຄວາມໝັ້ນໃຈ 80%. (b) Boxplot, ຂໍ້ມູນຄວາມຮັ່ງມີດິບຂອງ Shannon (ຈຸດ) ແລະ c. ຄວາມຮັ່ງມີທີ່ສັງເກດເຫັນໄດ້. Boxplots ສະແດງກ່ອງສຳລັບເສັ້ນກາງ, ຊ່ວງ interquartile (IQR), ແລະ 1.5 × IQR (n = 3).
ສ່ວນປະກອບຂອງຊຸມຊົນຈຸລິນຊີຂອງຕົວອ່ອນທີ່ກິນເກສອນພືດທີ່ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວດ້ວຍ mancozeb ແລະ ບໍ່ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວດ້ວຍ mancozeb. (ກ) ຄວາມອຸດົມສົມບູນທີ່ກ່ຽວຂ້ອງຂອງສະກຸນຈຸລິນຊີໃນຕົວອ່ອນ. (ຂ) ແຜນທີ່ຄວາມຮ້ອນຂອງຊຸມຊົນຈຸລິນຊີທີ່ກຳນົດ. Delftia (ອັດຕາສ່ວນໂອກາດ (OR) = 0.67, P = 0.0030) ແລະ Pseudomonas (OR = 0.3, P = 0.0074), Microbacterium (OR = 0.75, P = 0.0617) (OR = 1.5, P = 0.0060); ແຖວແຜນທີ່ຄວາມຮ້ອນຖືກຈັດກຸ່ມໂດຍໃຊ້ໄລຍະທາງສຳພັນ ແລະ ການເຊື່ອມຕໍ່ສະເລ່ຍ.
ຜົນໄດ້ຮັບຂອງພວກເຮົາສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າການສຳຜັດທາງປາກກັບຢາຂ້າເຊື້ອລາ (mancozeb) ແລະ ຢາຂ້າເຊື້ອລາທົ່ວລະບົບ (pyrostrobin ແລະ trifloxystrobin) ທີ່ນຳໃຊ້ຢ່າງກວ້າງຂວາງໃນຊ່ວງອອກດອກ, ຊ່ວຍຫຼຸດຜ່ອນການເພີ່ມນ້ຳໜັກ ແລະ ເພີ່ມອັດຕາການຕາຍຂອງຕົວອ່ອນສາລີ. ນອກຈາກນັ້ນ, mancozeb ຍັງຊ່ວຍຫຼຸດຜ່ອນຄວາມຫຼາກຫຼາຍ ແລະ ຄວາມອຸດົມສົມບູນຂອງຈຸລິນຊີໃນໄລຍະກ່ອນການເກີດລູກຢ່າງຫຼວງຫຼາຍ. Myclobutanil, ຢາຂ້າເຊື້ອລາທົ່ວລະບົບອີກຊະນິດໜຶ່ງ, ຊ່ວຍຫຼຸດຜ່ອນການເພີ່ມນ້ຳໜັກຕົວຂອງຕົວອ່ອນຢ່າງຫຼວງຫຼາຍໃນທຸກສາມຄັ້ງ. ຜົນກະທົບນີ້ແມ່ນເຫັນໄດ້ຊັດເຈນໃນຈຸດເວລາທີສອງ (ມື້ທີ 5) ແລະ ທີສາມ (ມື້ທີ 8). ໃນທາງກົງກັນຂ້າມ, cyprodinil ແລະ captan ບໍ່ໄດ້ຫຼຸດຜ່ອນການເພີ່ມນ້ຳໜັກ ຫຼື ການຢູ່ລອດຢ່າງຫຼວງຫຼາຍເມື່ອທຽບກັບກຸ່ມຄວບຄຸມ. ຕາມຄວາມຮູ້ຂອງພວກເຮົາ, ວຽກງານນີ້ແມ່ນຄັ້ງທຳອິດທີ່ກຳນົດຜົນກະທົບຂອງອັດຕາການໃຊ້ສານຂ້າເຊື້ອລາທີ່ແຕກຕ່າງກັນທີ່ໃຊ້ໃນການປົກປ້ອງພືດສາລີໂດຍຜ່ານການສຳຜັດກັບເກສອນດອກໄມ້ໂດຍກົງ.
ການປິ່ນປົວດ້ວຍຢາຂ້າເຊື້ອລາທັງໝົດຊ່ວຍຫຼຸດຜ່ອນການເພີ່ມນ້ຳໜັກຕົວໄດ້ຢ່າງຫຼວງຫຼາຍເມື່ອທຽບກັບການປິ່ນປົວຄວບຄຸມ. Mancozeb ມີຜົນກະທົບຫຼາຍທີ່ສຸດຕໍ່ການເພີ່ມນ້ຳໜັກຕົວຂອງຕົວອ່ອນໂດຍສະເລ່ຍຫຼຸດລົງ 51%, ຕາມດ້ວຍ pyrithiostrobin. ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ການສຶກສາອື່ນໆບໍ່ໄດ້ລາຍງານຜົນກະທົບທີ່ບໍ່ດີຂອງຢາຂ້າເຊື້ອລາໃນປະລິມານທີ່ນຳໃຊ້ໃນສະໜາມໃນໄລຍະຂອງຕົວອ່ອນ44. ເຖິງແມ່ນວ່າຢາຂ້າເຊື້ອລາ dithiocarbamate ໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າມີຄວາມເປັນພິດສ້ວຍແຫຼມຕ່ຳ45, ethylene bisdithiocarbamates (EBDCS) ເຊັ່ນ mancozeb ສາມາດເສື່ອມສະພາບເປັນ urea ethylene sulfide. ເນື່ອງຈາກຜົນກະທົບຕໍ່ການກາຍພັນໃນສັດອື່ນໆ, ຜະລິດຕະພັນການເສື່ອມສະພາບນີ້ອາດຈະເປັນສາເຫດຂອງຜົນກະທົບທີ່ສັງເກດເຫັນ46,47. ການສຶກສາກ່ອນໜ້ານີ້ໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າການສ້າງ ethylene thiourea ແມ່ນໄດ້ຮັບອິດທິພົນຈາກປັດໃຈຕ່າງໆເຊັ່ນ: ອຸນຫະພູມສູງ48, ລະດັບຄວາມຊຸ່ມຊື່ນ49 ແລະ ໄລຍະເວລາຂອງການເກັບຮັກສາຜະລິດຕະພັນ50. ເງື່ອນໄຂການເກັບຮັກສາທີ່ເໝາະສົມສຳລັບຢາຂ້າເຊື້ອລາສາມາດຫຼຸດຜ່ອນຜົນຂ້າງຄຽງເຫຼົ່ານີ້ໄດ້. ນອກຈາກນັ້ນ, ອົງການຄວາມປອດໄພດ້ານອາຫານເອີຣົບໄດ້ສະແດງຄວາມກັງວົນກ່ຽວກັບຄວາມເປັນພິດຂອງ pyrithiopide, ເຊິ່ງໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າເປັນສານກໍ່ມະເຮັງຕໍ່ລະບົບຍ່ອຍອາຫານຂອງສັດອື່ນໆ51.
ການໃຫ້ຢາ mancozeb, pyrithiostrobin, ແລະ trifloxystrobin ທາງປາກເພີ່ມອັດຕາການຕາຍຂອງຕົວອ່ອນເຈາະເຂົ້າສາລີ. ໃນທາງກົງກັນຂ້າມ, myclobutanil, ciprocycline ແລະ captan ບໍ່ມີຜົນກະທົບຕໍ່ອັດຕາການຕາຍ. ຜົນໄດ້ຮັບເຫຼົ່ານີ້ແຕກຕ່າງຈາກຜົນຂອງ Ladurner ແລະ ຄະນະ52, ຜູ້ທີ່ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າ captan ຫຼຸດຜ່ອນການຢູ່ລອດຂອງຕົວເຕັມໄວ O. lignaria ແລະ Apis mellifera L. (Hymenoptera, Apisidae) ຢ່າງຫຼວງຫຼາຍ. ນອກຈາກນັ້ນ, ຢາຂ້າເຊື້ອລາເຊັ່ນ captan ແລະ boscalid ໄດ້ຖືກພົບເຫັນວ່າເປັນສາເຫດຂອງການຕາຍຂອງຕົວອ່ອນ52,53,54 ຫຼືປ່ຽນແປງພຶດຕິກຳການກິນອາຫານ55. ການປ່ຽນແປງເຫຼົ່ານີ້, ໃນທາງກັບກັນ, ສາມາດສົ່ງຜົນກະທົບຕໍ່ຄຸນນະພາບທາງໂພຊະນາການຂອງເກສອນດອກໄມ້ ແລະ ໃນທີ່ສຸດກໍ່ເປັນການເພີ່ມພະລັງງານຂອງໄລຍະຕົວອ່ອນ. ອັດຕາການຕາຍທີ່ສັງເກດເຫັນໃນກຸ່ມຄວບຄຸມສອດຄ່ອງກັບການສຶກສາອື່ນໆ56,57.
ອັດຕາສ່ວນເພດທີ່ມັກເພດຊາຍທີ່ສັງເກດເຫັນໃນວຽກງານຂອງພວກເຮົາອາດຈະອະທິບາຍໄດ້ໂດຍປັດໃຈຕ່າງໆເຊັ່ນ: ການຫາຄູ່ທີ່ບໍ່ພຽງພໍ ແລະ ສະພາບອາກາດທີ່ບໍ່ດີໃນຊ່ວງອອກດອກ, ດັ່ງທີ່ Vicens ແລະ Bosch ໄດ້ແນະນຳມາກ່ອນສຳລັບ O. cornuta. ເຖິງແມ່ນວ່າເພດຍິງ ແລະ ເພດຊາຍໃນການສຶກສາຂອງພວກເຮົາມີເວລາສີ່ມື້ເພື່ອຫາຄູ່ (ໄລຍະເວລາທີ່ຖືວ່າພຽງພໍສຳລັບການຫາຄູ່ທີ່ປະສົບຜົນສຳເລັດ), ພວກເຮົາໄດ້ຫຼຸດຜ່ອນຄວາມເຂັ້ມຂອງແສງໂດຍເຈດຕະນາເພື່ອຫຼຸດຜ່ອນຄວາມກົດດັນ. ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ການດັດແປງນີ້ອາດຈະແຊກແຊງຂະບວນການຫາຄູ່ໂດຍບໍ່ຕັ້ງໃຈ61. ນອກຈາກນັ້ນ, ເຜິ້ງປະສົບກັບສະພາບອາກາດທີ່ບໍ່ດີຫຼາຍມື້, ລວມທັງຝົນ ແລະ ອຸນຫະພູມຕໍ່າ (<5°C), ເຊິ່ງຍັງສາມາດສົ່ງຜົນກະທົບທາງລົບຕໍ່ຄວາມສຳເລັດໃນການຫາຄູ່4,23.
ເຖິງແມ່ນວ່າການສຶກສາຂອງພວກເຮົາໄດ້ສຸມໃສ່ຈຸລິນຊີທັງໝົດຂອງຕົວອ່ອນ, ແຕ່ຜົນໄດ້ຮັບຂອງພວກເຮົາໃຫ້ຄວາມເຂົ້າໃຈກ່ຽວກັບຄວາມສຳພັນທີ່ອາດເກີດຂຶ້ນລະຫວ່າງຊຸມຊົນເຊື້ອແບັກທີເຣຍທີ່ອາດຈະມີຄວາມສຳຄັນຕໍ່ໂພຊະນາການຂອງເຜິ້ງ ແລະ ການສຳຜັດກັບຢາຂ້າເຊື້ອລາ. ຕົວຢ່າງ, ຕົວອ່ອນທີ່ໄດ້ຮັບເກສອນດອກໄມ້ທີ່ປິ່ນປົວດ້ວຍ mancozeb ມີໂຄງສ້າງຊຸມຊົນຈຸລິນຊີ ແລະ ຄວາມອຸດົມສົມບູນຫຼຸດລົງຢ່າງຫຼວງຫຼາຍເມື່ອທຽບກັບຕົວອ່ອນທີ່ໄດ້ຮັບເກສອນດອກໄມ້ທີ່ປິ່ນປົວດ້ວຍ mancozeb. ໃນຕົວອ່ອນທີ່ບໍລິໂພກເກສອນດອກໄມ້ທີ່ປິ່ນປົວດ້ວຍ, ກຸ່ມເຊື້ອແບັກທີເຣຍ Proteobacteria ແລະ Actinobacteria ແມ່ນເດັ່ນ ແລະ ສ່ວນໃຫຍ່ແມ່ນມີການເຄື່ອນໄຫວແບບ aerobic ຫຼື facultatively aerobic. ເຊື້ອແບັກທີເຣຍ Delft, ໂດຍປົກກະຕິແລ້ວກ່ຽວຂ້ອງກັບຊະນິດເຜິ້ງດ່ຽວ, ເປັນທີ່ຮູ້ຈັກວ່າມີກິດຈະກຳຕ້ານເຊື້ອແບັກທີເຣຍ, ຊີ້ບອກເຖິງບົດບາດປ້ອງກັນທີ່ມີທ່າແຮງຕໍ່ກັບເຊື້ອພະຍາດ. ເຊື້ອແບັກທີເຣຍອີກຊະນິດໜຶ່ງ, Pseudomonas, ມີຢູ່ຢ່າງຫຼວງຫຼາຍໃນຕົວອ່ອນທີ່ໄດ້ຮັບເກສອນດອກໄມ້ທີ່ປິ່ນປົວດ້ວຍ mancozeb, ແຕ່ໄດ້ຫຼຸດລົງຢ່າງຫຼວງຫຼາຍໃນຕົວອ່ອນທີ່ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວດ້ວຍ mancozeb. ຜົນໄດ້ຮັບຂອງພວກເຮົາສະໜັບສະໜູນການສຶກສາກ່ອນໜ້ານີ້ທີ່ລະບຸ Pseudomonas ວ່າເປັນໜຶ່ງໃນສະກຸນທີ່ອຸດົມສົມບູນທີ່ສຸດໃນ O. bicornis35 ແລະ ຕົວຕໍ່ດ່ຽວອື່ນໆ34. ເຖິງແມ່ນວ່າຫຼັກຖານການທົດລອງສຳລັບບົດບາດຂອງ Pseudomonas ໃນສຸຂະພາບຂອງ O. cornifrons ຍັງບໍ່ທັນໄດ້ຖືກສຶກສາ, ແຕ່ເຊື້ອແບັກທີເຣັຍນີ້ໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າສົ່ງເສີມການສັງເຄາະສານພິດປ້ອງກັນໃນແມງກະເບື້ອ Paederus fuscipes ແລະສົ່ງເສີມການເຜົາຜານອາຫານຂອງ arginine ໃນຫຼອດທົດລອງ 35, 65. ການສັງເກດເຫຼົ່ານີ້ຊີ້ໃຫ້ເຫັນເຖິງບົດບາດທີ່ມີທ່າແຮງໃນການປ້ອງກັນໄວຣັດ ແລະ ເຊື້ອແບັກທີເຣັຍໃນຊ່ວງເວລາການພັດທະນາຂອງຕົວອ່ອນ O. cornifrons. Microbacterium ແມ່ນສະກຸນອື່ນທີ່ລະບຸໄວ້ໃນການສຶກສາຂອງພວກເຮົາທີ່ມີລາຍງານວ່າມີຢູ່ໃນຈຳນວນສູງໃນຕົວອ່ອນແມງວັນທະຫານດຳພາຍໃຕ້ສະພາບການອຶດຫິວ 66. ໃນຕົວອ່ອນ O. cornifrons, microbacterium ອາດຈະປະກອບສ່ວນເຂົ້າໃນຄວາມສົມດຸນ ແລະ ຄວາມຢືດຢຸ່ນຂອງ microbiome ໃນລຳໄສ້ພາຍໃຕ້ສະພາບຄວາມກົດດັນ. ນອກຈາກນັ້ນ, Rhodococcus ຍັງພົບໃນຕົວອ່ອນ O. cornifrons ແລະ ເປັນທີ່ຮູ້ຈັກສຳລັບຄວາມສາມາດໃນການກຳຈັດສານພິດ 67. ສະກຸນນີ້ຍັງພົບໃນລຳໄສ້ຂອງ A. florea, ແຕ່ມີຄວາມອຸດົມສົມບູນຕໍ່າຫຼາຍ 68. ຜົນໄດ້ຮັບຂອງພວກເຮົາສະແດງໃຫ້ເຫັນເຖິງການປ່ຽນແປງທາງພັນທຸກຳຫຼາຍຢ່າງໃນທົ່ວກຸ່ມຈຸລິນຊີຫຼາຍຢ່າງທີ່ສາມາດປ່ຽນແປງຂະບວນການເຜົາຜານອາຫານໃນຕົວອ່ອນ. ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ຕ້ອງມີຄວາມເຂົ້າໃຈທີ່ດີຂຶ້ນກ່ຽວກັບຄວາມຫຼາກຫຼາຍທາງໜ້າທີ່ຂອງ O. cornifrons.
ສະຫຼຸບແລ້ວ, ຜົນໄດ້ຮັບຊີ້ໃຫ້ເຫັນວ່າ mancozeb, pyrithiostrobin, ແລະ trifloxystrobin ຊ່ວຍຫຼຸດຜ່ອນການເພີ່ມນ້ຳໜັກຕົວ ແລະ ເພີ່ມອັດຕາການຕາຍຂອງຕົວອ່ອນເຈາະໝາກສາລີ. ເຖິງແມ່ນວ່າມີຄວາມກັງວົນເພີ່ມຂຶ້ນກ່ຽວກັບຜົນກະທົບຂອງຢາຂ້າເຊື້ອລາຕໍ່ຕົວປະສົມເກສອນ, ແຕ່ມີຄວາມຕ້ອງການທີ່ຈະເຂົ້າໃຈຜົນກະທົບຂອງສານປະສົມທີ່ເຫຼືອຂອງສານປະກອບເຫຼົ່ານີ້ໃຫ້ດີຂຶ້ນ. ຜົນໄດ້ຮັບເຫຼົ່ານີ້ສາມາດລວມເຂົ້າໃນຄຳແນະນຳສຳລັບໂຄງການຄຸ້ມຄອງການປະສົມເກສອນແບບປະສົມປະສານທີ່ຊ່ວຍໃຫ້ຊາວກະສິກອນຫຼີກລ່ຽງການໃຊ້ຢາຂ້າເຊື້ອລາບາງຊະນິດກ່ອນ ແລະ ໃນລະຫວ່າງການອອກດອກຂອງຕົ້ນໄມ້ໃຫ້ໝາກໂດຍການເລືອກຢາຂ້າເຊື້ອລາ ແລະ ການປ່ຽນແປງເວລາຂອງການນຳໃຊ້, ຫຼື ໂດຍການຊຸກຍູ້ໃຫ້ໃຊ້ທາງເລືອກທີ່ເປັນອັນຕະລາຍໜ້ອຍກວ່າ 36. ຂໍ້ມູນນີ້ມີຄວາມສຳຄັນສຳລັບການພັດທະນາຄຳແນະນຳກ່ຽວກັບການໃຊ້ຢາປາບສັດຕູພືດ, ເຊັ່ນ: ການປັບໂຄງການສີດພົ່ນທີ່ມີຢູ່ ແລະ ການປ່ຽນແປງເວລາສີດພົ່ນເມື່ອເລືອກຢາຂ້າເຊື້ອລາ ຫຼື ການສົ່ງເສີມການໃຊ້ທາງເລືອກທີ່ເປັນອັນຕະລາຍໜ້ອຍກວ່າ. ຕ້ອງມີການຄົ້ນຄວ້າຕື່ມອີກກ່ຽວກັບຜົນກະທົບທາງລົບຂອງຢາຂ້າເຊື້ອລາຕໍ່ອັດຕາສ່ວນເພດ, ພຶດຕິກຳການກິນອາຫານ, ຈຸລິນຊີໃນລຳໄສ້, ແລະ ກົນໄກໂມເລກຸນທີ່ຢູ່ເບື້ອງຫຼັງການສູນເສຍນ້ຳໜັກ ແລະ ການຕາຍຂອງເຈາະໝາກສາລີ.
ແຫຼ່ງຂໍ້ມູນ 1, 2 ແລະ 3 ໃນຮູບທີ 1 ແລະ 2 ໄດ້ຖືກຝາກໄວ້ໃນບ່ອນເກັບຂໍ້ມູນ figshare DOI: https://doi.org/10.6084/m9.figshare.24996245 ແລະ https://doi.org/10.6084/m9. figshare.24996233. ລຳດັບທີ່ໄດ້ວິເຄາະໃນການສຶກສາໃນປະຈຸບັນ (ຮູບທີ 4, 5) ມີຢູ່ໃນບ່ອນເກັບຂໍ້ມູນ NCBI SRA ພາຍໃຕ້ເລກທີ່ເຂົ້າເຖິງ PRJNA1023565.
Bosch, J. ແລະ Kemp, WP ການພັດທະນາ ແລະ ການສ້າງຕັ້ງຊະນິດເຜິ້ງນໍ້າເຜິ້ງເປັນຕົວປະສົມເກສອນຂອງພືດກະສິກຳ: ຕົວຢ່າງຂອງສະກຸນ Osmia. (Hymenoptera: Megachilidae) ແລະ ຕົ້ນໄມ້ໃຫ້ໝາກ. bull. Ntomore. resource. 92, 3–16 (2002).
Parker, MG ແລະ ອື່ນໆ. ການປະຕິບັດກ່ຽວກັບການປະສົມເກສອນ ແລະ ການຮັບຮູ້ຂອງຕົວປະສົມເກສອນທາງເລືອກໃນບັນດາຜູ້ປູກໝາກໂປມໃນນິວຢອກ ແລະ ເພັນຊິລເວເນຍ. ອັບເດດ. ກະສິກຳ. ລະບົບອາຫານ. 35, 1–14 (2020).
Koch I., Lonsdorf EW, Artz DR, Pitts-Singer TL ແລະ Ricketts TH ນິເວດວິທະຍາ ແລະ ເສດຖະກິດຂອງການປະສົມເກສອນຂອງໝາກອາມອນໂດຍໃຊ້ເຜິ້ງພື້ນເມືອງ. J. Economics. Ntomore. 111, 16–25 (2018).
Lee, E., He, Y., ແລະ Park, Y.-L. ຜົນກະທົບຂອງການປ່ຽນແປງຂອງດິນຟ້າອາກາດຕໍ່ລັກສະນະທາງພັນທຸກໍາຂອງ tragopan: ຜົນສະທ້ອນຕໍ່ການຄຸ້ມຄອງປະຊາກອນ. Climb. Change 150, 305–317 (2018).
Artz, DR ແລະ Pitts-Singer, TL ຜົນກະທົບຂອງຢາຂ້າເຊື້ອລາ ແລະ ຢາສີດພົ່ນເສີມຕໍ່ພຶດຕິກຳການວາງໄຂ່ຂອງເຜິ້ງສອງໂຕທີ່ຖືກຄຸ້ມຄອງແບບໂດດດ່ຽວ (Osmia lignaria ແລະ Megachile rotundata). PloS One 10, e0135688 (2015).
Beauvais, S. ແລະ ອື່ນໆ. ຢາຂ້າເຊື້ອລາພືດທີ່ມີພິດຕ່ຳ (fenbuconazole) ລົບກວນສັນຍານຄຸນນະພາບການຈະເລີນພັນຂອງຜຶ້ງເພດຜູ້ ເຊິ່ງເຮັດໃຫ້ຄວາມສຳເລັດໃນການຫາຄູ່ຫຼຸດລົງໃນຜຶ້ງປ່າທີ່ໂດດດ່ຽວ. J. Apps. ecology. 59, 1596–1607 (2022).
Sgolastra F. ແລະ ອື່ນໆ. ຢາຂ້າແມງໄມ້ Neonicotinoid ແລະ ການສັງເຄາະ ergosterol ສະກັດກັ້ນການຕາຍຂອງເຊື້ອລາຮ່ວມໃນເຜິ້ງສາມຊະນິດ. ການຄວບຄຸມສັດຕູພືດ. ວິທະຍາສາດ. 73, 1236–1243 (2017).
Kuhneman JG, Gillung J, Van Dyck MT, Fordyce RF. ແລະ Danforth BN ຕົວອ່ອນແມງມຸມດ່ຽວປ່ຽນແປງຄວາມຫຼາກຫຼາຍຂອງເຊື້ອແບັກທີເຣຍທີ່ສະໜອງໃຫ້ໂດຍເກສອນດອກໄມ້ໃຫ້ແກ່ເຜິ້ງ Osmia cornifrons (Megachilidae). ດ້ານໜ້າ. ຈຸລິນຊີ. 13, 1057626 (2023).
Dharampal PS, Danforth BN ແລະ Steffan SA ຈຸລິນຊີທີ່ອາໄສຢູ່ຮ່ວມກັນໃນເກສອນດອກໄມ້ທີ່ໝັກແມ່ນມີຄວາມສຳຄັນຕໍ່ການພັດທະນາຂອງເຜິ້ງທີ່ໂດດດ່ຽວຄືກັບເກສອນດອກໄມ້ເອງ. ນິເວດວິທະຍາ. ວິວັດທະນາການ. 12. e8788 (2022).
Kelderer M, Manici LM, Caputo F ແລະ Thalheimer M. ການປູກລະຫວ່າງແຖວໃນສວນໝາກແອັບເປິ້ນເພື່ອຄວບຄຸມພະຍາດທີ່ເກີດການຫວ່ານແກ່ນຄືນໃໝ່: ການສຶກສາປະສິດທິພາບຕົວຈິງໂດຍອີງໃສ່ຕົວຊີ້ວັດຂອງຈຸລິນຊີ. ດິນພືດ 357, 381–393 (2012).
Martin PL, Kravchik T., Khodadadi F., Achimovich SG ແລະ Peter KA ການເນົ່າເປື່ອຍຂົມຂອງໝາກໂປມໃນພາກກາງມະຫາສະໝຸດອັດລັງຕິກຂອງສະຫະລັດອາເມລິກາ: ການປະເມີນຊະນິດພັນທີ່ເປັນສາເຫດ ແລະ ອິດທິພົນຂອງສະພາບອາກາດໃນພາກພື້ນ ແລະ ຄວາມອ່ອນໄຫວຕໍ່ພັນ. ວາລະສານ Phytopathology 111, 966–981 (2021).
Cullen MG, Thompson LJ, Carolan JK, Stout JK. ແລະ Stanley DA ຢາຂ້າເຊື້ອລາ, ຢາຂ້າຫຍ້າ ແລະ ເຜິ້ງ: ການທົບທວນຢ່າງເປັນລະບົບກ່ຽວກັບການຄົ້ນຄວ້າ ແລະ ວິທີການທີ່ມີຢູ່ແລ້ວ. PLoS One 14, e0225743 (2019).
Pilling, ED ແລະ Jepson, PC ຜົນກະທົບຮ່ວມກັນຂອງຢາຂ້າເຊື້ອລາ EBI ແລະຢາຂ້າແມງໄມ້ pyrethroid ຕໍ່ເຜິ້ງນໍ້າເຜິ້ງ (Apis mellifera). ສັດຕູພືດຕໍ່ວິທະຍາສາດ. 39, 293–297 (1993).
Mussen, EC, Lopez, JE ແລະ Peng, CY ຜົນກະທົບຂອງຢາຂ້າເຊື້ອລາທີ່ເລືອກຕໍ່ການເຕີບໃຫຍ່ ແລະ ການພັດທະນາຂອງຕົວອ່ອນນໍ້າເຜິ້ງ Apis mellifera L. (Hymenoptera: Apidae). ວັນພຸດ. Ntomore. 33, 1151-1154 (2004).
Van Dyke, M., Mullen, E., Wickstead, D., ແລະ McArt, S. ຄູ່ມືການຕັດສິນໃຈສຳລັບການໃຊ້ຢາປາບສັດຕູພືດເພື່ອປົກປ້ອງຜູ້ປະສົມເກສອນໃນສວນຕົ້ນໄມ້ (ມະຫາວິທະຍາໄລ Cornell, 2018).
Iwasaki, JM ແລະ Hogendoorn, K. ການສຳຜັດກັບຢາຂ້າແມງໄມ້ທີ່ບໍ່ແມ່ນຢາປາບສັດຕູພືດຂອງເຜິ້ງ: ການທົບທວນວິທີການ ແລະ ຜົນໄດ້ຮັບທີ່ລາຍງານ. ກະສິກຳ. ລະບົບນິເວດ. ວັນພຸດ. 314, 107423 (2021).
Kopit AM, Klinger E, Cox-Foster DL, Ramirez RA. ແລະ Pitts-Singer TL ຜົນກະທົບຂອງຊະນິດຂອງການສະໜອງ ແລະ ການສຳຜັດກັບຢາປາບສັດຕູພືດຕໍ່ການພັດທະນາຕົວອ່ອນຂອງ Osmia lignaria (Hymenoptera: Megachilidae). ວັນພຸດ. Ntomore. 51, 240–251 (2022).
ເສັ້ນທາງການສຳຜັດກັບຢາປາບສັດຕູພືດຂອງ Kopit AM ແລະ Pitts-Singer TL ຕໍ່ຜຶ້ງຮັງເປົ່າດ່ຽວ. ວັນພຸດ. Ntomore. 47, 499–510 (2018).
Pan, NT ແລະ ອື່ນໆ. ໂປໂຕຄອນການວິເຄາະທາງຊີວະພາບການກິນແບບໃໝ່ສຳລັບການປະເມີນຄວາມເປັນພິດຂອງຢາປາບສັດຕູພືດໃນເຜິ້ງສວນຍີ່ປຸ່ນໂຕເຕັມໄວ (Osmia cornifrons). ວິທະຍາສາດ. ລາຍງານ 10, 9517 (2020).
ເວລາໂພສ: ວັນທີ 14 ພຶດສະພາ 2024