ຕົວຄວບຄຸມການຈະເລີນເຕີບໂຕຂອງພືດໄດ້ຖືກນໍາໃຊ້ເປັນຍຸດທະສາດເພື່ອຫຼຸດຜ່ອນຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນໃນພືດຕ່າງໆ

ການຜະລິດເຂົ້າກຳລັງຫຼຸດລົງຍ້ອນການປ່ຽນແປງຂອງດິນຟ້າອາກາດ ແລະ ຄວາມແຕກຕ່າງໃນປະເທດໂຄລົມເບຍ.ຕົວຄວບຄຸມການຈະເລີນເຕີບໂຕຂອງພືດໄດ້ຖືກນໍາໃຊ້ເປັນຍຸດທະສາດເພື່ອຫຼຸດຜ່ອນຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນໃນພືດຕ່າງໆ. ດັ່ງນັ້ນ, ຈຸດປະສົງຂອງການສຶກສານີ້ແມ່ນເພື່ອປະເມີນຜົນກະທົບທາງສະລີລະວິທະຍາ (ຄວາມນຳໄຟຟ້າຂອງປາກໃບ, ຄວາມນຳໄຟຟ້າຂອງປາກໃບ, ປະລິມານຄລໍໂຣຟິວທັງໝົດ, ອັດຕາສ່ວນ Fv/Fm ຂອງສອງພັນຍາເຂົ້າທີ່ຜະລິດເພື່ອການຄ້າທີ່ໄດ້ຮັບຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນລວມ (ອຸນຫະພູມກາງເວັນ ແລະ ກາງຄືນສູງ), ອຸນຫະພູມເຮືອນຍອດ ແລະ ປະລິມານນ້ຳທຽບເທົ່າ) ແລະ ຕົວແປທາງຊີວະເຄມີ (malondialdehyde (MDA) ແລະ ປະລິມານກົດໂປຣລີນິກ). ການທົດລອງຄັ້ງທຳອິດ ແລະ ຄັ້ງທີສອງໄດ້ຖືກປະຕິບັດໂດຍໃຊ້ພືດທີ່ມີພັນຍາເຂົ້າສອງພັນຍາຄື Federrose 67 (“F67”) ແລະ Federrose 2000 (“F2000”) ຕາມລໍາດັບ. ການທົດລອງທັງສອງໄດ້ຖືກວິເຄາະຮ່ວມກັນເປັນຊຸດຂອງການທົດລອງ. ການປິ່ນປົວທີ່ໄດ້ສ້າງຕັ້ງຂຶ້ນມີດັ່ງນີ້: ການຄວບຄຸມຢ່າງແທ້ຈິງ (AC) (ຕົ້ນເຂົ້າທີ່ປູກໃນອຸນຫະພູມທີ່ດີທີ່ສຸດ (ອຸນຫະພູມກາງເວັນ/ກາງຄືນ 30/25°C)), ການຄວບຄຸມຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ (SC) [ຕົ້ນເຂົ້າທີ່ຜະລິດເພື່ອຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນລວມເທົ່ານັ້ນ (40/25°C). 30°C)], ແລະຕົ້ນເຂົ້າໄດ້ຖືກກົດດັນ ແລະ ສີດພົ່ນດ້ວຍສານຄວບຄຸມການຈະເລີນເຕີບໂຕຂອງພືດ (ກົດດັນ+AUX, ກົດດັນ+BR, ກົດດັນ+CK ຫຼື ກົດດັນ+GA) ສອງຄັ້ງ (5 ມື້ກ່ອນ ແລະ 5 ມື້ຫຼັງຈາກກົດດັນຄວາມຮ້ອນ). ການສີດພົ່ນດ້ວຍ SA ເພີ່ມປະລິມານຄລໍໂຣຟິວທັງໝົດຂອງທັງສອງພັນ (ນ້ຳໜັກສົດຂອງຕົ້ນເຂົ້າ “F67″ ແລະ “F2000″ ແມ່ນ 3.25 ແລະ 3.65 ມກ/ກ, ຕາມລຳດັບ) ເມື່ອທຽບກັບຕົ້ນເຂົ້າ SC (ນ້ຳໜັກສົດຂອງຕົ້ນເຂົ້າ “F67″ ແມ່ນ 2.36 ແລະ 2.56 ມກ). ກຣາມ-1)” ແລະ ເຂົ້າ “F2000″, ການໃຊ້ CK ທາງໃບໂດຍທົ່ວໄປຍັງປັບປຸງການນຳໄຟຟ້າປາກໃບຂອງຕົ້ນເຂົ້າ “F2000″ (499.25 ທຽບກັບ 150.60 mmol m-2 s) ເມື່ອທຽບກັບການຄວບຄຸມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ. ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ, ອຸນຫະພູມຂອງເຮືອນຍອດພືດຫຼຸດລົງ 2–3 °C, ແລະ ປະລິມານ MDA ໃນພືດຫຼຸດລົງ. ດັດຊະນີຄວາມທົນທານທຽບເທົ່າສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າການໃຊ້ CK (97.69%) ແລະ BR (60.73%) ທາງໃບສາມາດຊ່ວຍແກ້ໄຂບັນຫາຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນລວມໄດ້. ສ່ວນໃຫຍ່ແມ່ນຢູ່ໃນຕົ້ນເຂົ້າ F2000. ສະຫຼຸບແລ້ວ, ການສີດພົ່ນທາງໃບຂອງ BR ຫຼື CK ສາມາດພິຈາລະນາໄດ້ວ່າເປັນຍຸດທະສາດດ້ານກະສິກຳເພື່ອຊ່ວຍຫຼຸດຜ່ອນຜົນກະທົບທາງລົບຂອງເງື່ອນໄຂຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນລວມຕໍ່ພຶດຕິກຳທາງສະລີລະວິທະຍາຂອງຕົ້ນເຂົ້າ.
ເຂົ້າ (Oryza sativa) ເປັນຂອງຄອບຄົວ Poaceae ແລະ ເປັນໜຶ່ງໃນທັນຍາພືດທີ່ມີການປູກຫຼາຍທີ່ສຸດໃນໂລກພ້ອມກັບສາລີ ແລະ ເຂົ້າສາລີ (Bajaj ແລະ Mohanty, 2005). ເນື້ອທີ່ປູກເຂົ້າແມ່ນ 617,934 ເຮັກຕາ, ແລະ ຜົນຜະລິດແຫ່ງຊາດໃນປີ 2020 ແມ່ນ 2,937,840 ໂຕນ ດ້ວຍຜົນຜະລິດສະເລ່ຍ 5.02 ໂຕນ/ເຮັກຕາ (Federarción Nacional de Arroceros), 2021).
ພາວະໂລກຮ້ອນກຳລັງສົ່ງຜົນກະທົບຕໍ່ພືດເຂົ້າ, ເຊິ່ງນຳໄປສູ່ຄວາມກົດດັນທີ່ບໍ່ມີຊີວິດຊີວາຫຼາຍປະເພດເຊັ່ນ: ອຸນຫະພູມສູງ ແລະ ໄລຍະເວລາຂອງໄພແຫ້ງແລ້ງ. ການປ່ຽນແປງຂອງດິນຟ້າອາກາດກຳລັງເຮັດໃຫ້ອຸນຫະພູມໂລກເພີ່ມຂຶ້ນ; ອຸນຫະພູມຄາດວ່າຈະເພີ່ມຂຶ້ນ 1.0–3.7°C ໃນສະຕະວັດທີ 21, ເຊິ່ງອາດຈະເພີ່ມຄວາມຖີ່ ແລະ ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ. ອຸນຫະພູມສິ່ງແວດລ້ອມທີ່ເພີ່ມຂຶ້ນໄດ້ສົ່ງຜົນກະທົບຕໍ່ເຂົ້າ, ເຮັດໃຫ້ຜົນຜະລິດພືດຫຼຸດລົງ 6–7%. ໃນທາງກົງກັນຂ້າມ, ການປ່ຽນແປງຂອງດິນຟ້າອາກາດຍັງນຳໄປສູ່ສະພາບແວດລ້ອມທີ່ບໍ່ເອື້ອອຳນວຍຕໍ່ພືດ, ເຊັ່ນ: ໄລຍະເວລາຂອງໄພແຫ້ງແລ້ງຮ້າຍແຮງ ຫຼື ອຸນຫະພູມສູງໃນພາກພື້ນເຂດຮ້ອນ ແລະ ເຂດຮ້ອນຊຸ່ມ. ນອກຈາກນັ້ນ, ເຫດການການປ່ຽນແປງເຊັ່ນ: ເອນນີໂນ ສາມາດນຳໄປສູ່ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ ແລະ ເຮັດໃຫ້ຄວາມເສຍຫາຍຂອງພືດຮ້າຍແຮງຂຶ້ນໃນບາງພາກພື້ນເຂດຮ້ອນ. ໃນປະເທດໂຄລົມເບຍ, ອຸນຫະພູມໃນພື້ນທີ່ຜະລິດເຂົ້າຄາດວ່າຈະເພີ່ມຂຶ້ນ 2–2.5°C ພາຍໃນປີ 2050, ເຊິ່ງເຮັດໃຫ້ການຜະລິດເຂົ້າຫຼຸດລົງ ແລະ ສົ່ງຜົນກະທົບຕໍ່ການໄຫຼເຂົ້າຂອງຜະລິດຕະພັນໄປສູ່ຕະຫຼາດ ແລະ ລະບົບຕ່ອງໂສ້ການສະໜອງ.
ພືດເຂົ້າສ່ວນໃຫຍ່ແມ່ນປູກຢູ່ໃນພື້ນທີ່ທີ່ມີອຸນຫະພູມໃກ້ຄຽງກັບລະດັບທີ່ດີທີ່ສຸດສຳລັບການເຕີບໂຕຂອງພືດ (Shah et al., 2011). ມີລາຍງານວ່າອຸນຫະພູມສະເລ່ຍກາງເວັນ ແລະ ກາງຄືນທີ່ດີທີ່ສຸດສຳລັບການເຕີບໃຫຍ່ ແລະ ການພັດທະນາຂອງເຂົ້າໂດຍທົ່ວໄປແມ່ນ 28°C ແລະ 22°C ຕາມລຳດັບ (Kilasi et al., 2018; Calderón-Páez et al., 2021). ອຸນຫະພູມທີ່ສູງກວ່າຂອບເຂດເຫຼົ່ານີ້ສາມາດເຮັດໃຫ້ເກີດໄລຍະເວລາຂອງຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນປານກາງຫາຮຸນແຮງໃນໄລຍະທີ່ອ່ອນໄຫວຂອງການພັດທະນາເຂົ້າ (ການແຕກໜໍ່, ການອອກດອກ, ການອອກດອກ, ແລະ ການເຕັມເມັດ), ດັ່ງນັ້ນຈຶ່ງສົ່ງຜົນກະທົບທາງລົບຕໍ່ຜົນຜະລິດຂອງເມັດພືດ. ການຫຼຸດລົງຂອງຜົນຜະລິດນີ້ສ່ວນໃຫຍ່ແມ່ນຍ້ອນໄລຍະເວລາທີ່ຍາວນານຂອງຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ, ເຊິ່ງສົ່ງຜົນກະທົບຕໍ່ສະລີລະວິທະຍາຂອງພືດ. ເນື່ອງຈາກການພົວພັນຂອງປັດໃຈຕ່າງໆ, ເຊັ່ນໄລຍະເວລາຂອງຄວາມກົດດັນ ແລະ ອຸນຫະພູມສູງສຸດທີ່ບັນລຸໄດ້, ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນສາມາດເຮັດໃຫ້ເກີດຄວາມເສຍຫາຍທີ່ບໍ່ສາມາດແກ້ໄຂໄດ້ຕໍ່ການເຜົາຜານອາຫານ ແລະ ການພັດທະນາຂອງພືດ.
ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນສົ່ງຜົນກະທົບຕໍ່ຂະບວນການທາງສະລີລະວິທະຍາ ແລະ ຊີວະເຄມີຕ່າງໆໃນພືດ. ການສັງເຄາະແສງຂອງໃບແມ່ນໜຶ່ງໃນຂະບວນການທີ່ມີຄວາມອ່ອນໄຫວຕໍ່ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນຫຼາຍທີ່ສຸດໃນຕົ້ນເຂົ້າ, ຍ້ອນວ່າອັດຕາການສັງເຄາະແສງຫຼຸດລົງ 50% ເມື່ອອຸນຫະພູມປະຈຳວັນເກີນ 35°C. ການຕອບສະໜອງທາງສະລີລະວິທະຍາຂອງຕົ້ນເຂົ້າແຕກຕ່າງກັນໄປຕາມປະເພດຂອງຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ. ຕົວຢ່າງ, ອັດຕາການສັງເຄາະແສງ ແລະ ການນຳໄຟຟ້າຂອງປາກໃບຈະຖືກຍັບຍັ້ງເມື່ອພືດໄດ້ຮັບອຸນຫະພູມສູງໃນຕອນກາງເວັນ (33–40°C) ຫຼື ອຸນຫະພູມກາງເວັນ ແລະ ກາງຄືນສູງ (35–40°C ໃນຕອນກາງເວັນ, 28–30°C). C ໝາຍເຖິງກາງຄືນ) (Lü et al., 2013; Fahad et al., 2016; Chaturvedi et al., 2017). ອຸນຫະພູມກາງຄືນສູງ (30°C) ເຮັດໃຫ້ການຍັບຍັ້ງການສັງເຄາະແສງປານກາງ ແຕ່ເພີ່ມການຫາຍໃຈໃນຕອນກາງຄືນ (Fahad et al., 2016; Alvarado-Sanabria et al., 2017). ບໍ່ວ່າຈະເປັນໄລຍະເວລາຄວາມກົດດັນແນວໃດກໍຕາມ, ຄວາມກົດດັນຈາກຄວາມຮ້ອນຍັງສົ່ງຜົນກະທົບຕໍ່ປະລິມານຄໍໂລຟິວຂອງໃບ, ອັດຕາສ່ວນຂອງການເຍືອງແສງຂອງຄໍໂລຟິວທີ່ປ່ຽນແປງໄດ້ຕໍ່ການເຍືອງແສງຂອງຄໍໂລຟິວສູງສຸດ (Fv/Fm), ແລະ ການກະຕຸ້ນຂອງ Rubisco ໃນຕົ້ນເຂົ້າ (Cao et al. 2009; Yin et al. 2010). ) Sanchez Reynoso et al., 2014).
ການປ່ຽນແປງທາງຊີວະເຄມີແມ່ນລັກສະນະອີກອັນໜຶ່ງຂອງການປັບຕົວຂອງພືດຕໍ່ກັບຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ (Wahid et al., 2007). ປະລິມານໂປຣລີນໄດ້ຖືກນໍາໃຊ້ເປັນຕົວຊີ້ວັດທາງຊີວະເຄມີຂອງຄວາມກົດດັນຂອງພືດ (Ahmed ແລະ Hassan 2011). ໂປຣລີນມີບົດບາດສໍາຄັນໃນການເຜົາຜານອາຫານຂອງພືດຍ້ອນວ່າມັນເຮັດຫນ້າທີ່ເປັນແຫຼ່ງຄາບອນຫຼືໄນໂຕຣເຈນແລະເປັນຕົວຄວບຄຸມເຍື່ອຫຸ້ມພາຍໃຕ້ສະພາບອຸນຫະພູມສູງ (Sánchez-Reinoso et al., 2014). ອຸນຫະພູມສູງຍັງສົ່ງຜົນກະທົບຕໍ່ຄວາມໝັ້ນຄົງຂອງເຍື່ອຫຸ້ມໂດຍຜ່ານການຜຸພັງຂອງໄຂມັນ, ເຊິ່ງນໍາໄປສູ່ການສ້າງ malondialdehyde (MDA) (Wahid et al., 2007). ດັ່ງນັ້ນ, ປະລິມານ MDA ຍັງຖືກນໍາໃຊ້ເພື່ອເຂົ້າໃຈຄວາມສົມບູນຂອງໂຄງສ້າງຂອງເຍື່ອຫຸ້ມຈຸລັງພາຍໃຕ້ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ (Cao et al., 2009; Chavez-Arias et al., 2018). ສຸດທ້າຍ, ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນລວມ [37/30°C (ກາງເວັນ/ກາງຄືນ)] ເພີ່ມອັດຕາສ່ວນຂອງການຮົ່ວໄຫຼຂອງເອເລັກໂຕຣໄລແລະປະລິມານ malondialdehyde ໃນເຂົ້າ (Liu et al., 2013).
ການນໍາໃຊ້ສານຄວບຄຸມການຈະເລີນເຕີບໂຕຂອງພືດ (GRs) ໄດ້ຖືກປະເມີນເພື່ອຫຼຸດຜ່ອນຜົນກະທົບທາງລົບຂອງຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ, ຍ້ອນວ່າສານເຫຼົ່ານີ້ມີສ່ວນຮ່ວມຢ່າງຫ້າວຫັນໃນການຕອບສະໜອງຂອງພືດ ຫຼື ກົນໄກປ້ອງກັນທາງສະລີລະວິທະຍາຕໍ່ກັບຄວາມກົດດັນດັ່ງກ່າວ (Peleg ແລະ Blumwald, 2011; Yin et al. et al., 2011; Ahmed et al., 2015). ການນໍາໃຊ້ຊັບພະຍາກອນພັນທຸກໍາຈາກພາຍນອກມີຜົນກະທົບໃນທາງບວກຕໍ່ຄວາມທົນທານຕໍ່ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນໃນພືດຫຼາຍຊະນິດ. ການສຶກສາໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າຮໍໂມນພືດເຊັ່ນ: gibberellins (GA), cytokinins (CK), auxins (AUX) ຫຼື brassinosteroids (BR) ນໍາໄປສູ່ການເພີ່ມຂຶ້ນຂອງຕົວແປທາງສະລີລະວິທະຍາ ແລະ ຊີວະເຄມີຕ່າງໆ (Peleg ແລະ Blumwald, 2011; Yin et al. Ren, 2011; Mitler et al., 2012; Zhou et al., 2014). ໃນປະເທດໂຄລໍາເບຍ, ການນໍາໃຊ້ຊັບພະຍາກອນພັນທຸກໍາຈາກພາຍນອກ ແລະ ຜົນກະທົບຂອງມັນຕໍ່ພືດເຂົ້າຍັງບໍ່ທັນໄດ້ຮັບການເຂົ້າໃຈ ແລະ ສຶກສາຢ່າງເຕັມສ່ວນ. ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ການສຶກສາກ່ອນໜ້ານີ້ໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າການສີດພົ່ນ BR ທາງໃບສາມາດປັບປຸງຄວາມທົນທານຕໍ່ເຂົ້າໄດ້ໂດຍການປັບປຸງລັກສະນະການແລກປ່ຽນອາຍແກັສ, ປະລິມານຄລໍໂຣຟິວ ຫຼື ໂປຣລີນຂອງໃບຕົ້ນກ້າເຂົ້າ (Quintero-Calderón et al., 2021).
ໄຊໂຕໄຄນິນເປັນຕົວກາງໃນການຕອບສະໜອງຂອງພືດຕໍ່ກັບຄວາມກົດດັນທີ່ບໍ່ມີຊີວິດຊີວາ, ລວມທັງຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ (Ha et al., 2012). ນອກຈາກນັ້ນ, ມີລາຍງານວ່າການໃຊ້ CK ຈາກພາຍນອກສາມາດຫຼຸດຜ່ອນຄວາມເສຍຫາຍຈາກຄວາມຮ້ອນໄດ້. ຕົວຢ່າງ, ການໃຊ້ zeatin ຈາກພາຍນອກເພີ່ມອັດຕາການສັງເຄາະແສງ, ປະລິມານ chlorophyll a ແລະ b, ແລະປະສິດທິພາບການຂົນສົ່ງເອເລັກຕຣອນໃນຫຍ້າງໍທີ່ເລືອຄານ (Agrotis estolonifera) ໃນລະຫວ່າງຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ (Xu ແລະ Huang, 2009; Jespersen ແລະ Huang, 2015). ການໃຊ້ zeatin ຈາກພາຍນອກຍັງສາມາດປັບປຸງກິດຈະກໍາຕ້ານອະນຸມູນອິດສະລະ, ເສີມຂະຫຍາຍການສັງເຄາະໂປຣຕີນຕ່າງໆ, ຫຼຸດຜ່ອນຄວາມເສຍຫາຍຂອງຊະນິດອົກຊີເຈນທີ່ມີປະຕິກິລິຍາ (ROS) ແລະການຜະລິດ malondialdehyde (MDA) ໃນເນື້ອເຍື່ອພືດ (Chernyadyev, 2009; Yang et al., 2009). , 2016; Kumar et al., 2020).
ການໃຊ້ກົດ gibberellic ຍັງໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນເຖິງການຕອບສະໜອງໃນທາງບວກຕໍ່ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ. ການສຶກສາໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າການສັງເຄາະ GA ເປັນສື່ກາງໃນເສັ້ນທາງການເຜົາຜານອາຫານຕ່າງໆ ແລະ ເພີ່ມຄວາມທົນທານພາຍໃຕ້ສະພາບອຸນຫະພູມສູງ (Alonso-Ramirez et al. 2009; Khan et al. 2020). Abdel-Nabi et al. (2020) ພົບວ່າການສີດພົ່ນທາງໃບຂອງ GA ຈາກພາຍນອກ (25 ຫຼື 50 ມກ*ລິດ) ສາມາດເພີ່ມອັດຕາການສັງເຄາະແສງ ແລະ ກິດຈະກຳຕ້ານອະນຸມູນອິດສະລະໃນຕົ້ນສົ້ມທີ່ມີຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນເມື່ອທຽບກັບຕົ້ນຄວບຄຸມ. ມັນຍັງໄດ້ຖືກສັງເກດເຫັນວ່າການໃຊ້ HA ຈາກພາຍນອກເພີ່ມປະລິມານຄວາມຊຸ່ມຊື່ນທີ່ກ່ຽວຂ້ອງ, ປະລິມານ chlorophyll ແລະ carotenoid ແລະ ຫຼຸດຜ່ອນການຜຸພັງ lipid ໃນຕົ້ນອິນທະຜາລຳ (Phoenix dactylifera) ພາຍໃຕ້ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ (Khan et al., 2020). Auxin ຍັງມີບົດບາດສຳຄັນໃນການຄວບຄຸມການຕອບສະໜອງການເຕີບໂຕທີ່ປັບຕົວໄດ້ຕໍ່ສະພາບອຸນຫະພູມສູງ (Sun et al., 2012; Wang et al., 2016). ຕົວຄວບຄຸມການຈະເລີນເຕີບໂຕນີ້ເຮັດໜ້າທີ່ເປັນຕົວຊີ້ບອກທາງຊີວະເຄມີໃນຂະບວນການຕ່າງໆເຊັ່ນ: ການສັງເຄາະໂປຣລີນ ຫຼື ການເສື່ອມສະພາບພາຍໃຕ້ຄວາມກົດດັນທີ່ບໍ່ມີຊີວິດຊີວາ (Ali et al. 2007). ນອກຈາກນັ້ນ, AUX ຍັງຊ່ວຍເສີມສ້າງກິດຈະກຳຕ້ານອະນຸມູນອິດສະລະ, ເຊິ່ງນຳໄປສູ່ການຫຼຸດລົງຂອງ MDA ໃນພືດຍ້ອນການຫຼຸດລົງຂອງ lipid peroxidation (Bielach et al., 2017). Sergeev et al. (2018) ໄດ້ສັງເກດເຫັນວ່າໃນຕົ້ນຖົ່ວ (Pisum sativum) ພາຍໃຕ້ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ, ປະລິມານຂອງໂປຣລີນ – dimethylaminoethoxycarbonylmethyl)naphthylchloromethyl ether (TA-14) ຈະເພີ່ມຂຶ້ນ. ໃນການທົດລອງດຽວກັນ, ພວກເຂົາຍັງໄດ້ສັງເກດເຫັນລະດັບ MDA ຕ່ຳກວ່າໃນພືດທີ່ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວເມື່ອທຽບກັບພືດທີ່ບໍ່ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວດ້ວຍ AUX.
Brassinosteroids ແມ່ນສານຄວບຄຸມການຈະເລີນເຕີບໂຕອີກຊະນິດໜຶ່ງທີ່ໃຊ້ເພື່ອຫຼຸດຜ່ອນຜົນກະທົບຂອງຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ. Ogweno et al. (2008) ລາຍງານວ່າການສີດ BR ຈາກພາຍນອກເພີ່ມອັດຕາການສັງເຄາະແສງສຸດທິ, ການນຳໄຟຟ້າປາກໃບ ແລະ ອັດຕາສູງສຸດຂອງ Rubisco carboxylation ຂອງຕົ້ນໝາກເລັ່ນ (Solanum lycopersicum) ພາຍໃຕ້ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນເປັນເວລາ 8 ມື້. ການສີດ epibrassinosteroids ທາງໃບສາມາດເພີ່ມອັດຕາການສັງເຄາະແສງສຸດທິຂອງຕົ້ນໝາກແຕງ (Cucumis sativus) ພາຍໃຕ້ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ (Yu et al., 2004). ນອກຈາກນັ້ນ, ການໃຊ້ BR ຈາກພາຍນອກຍັງຊັກຊ້າການເສື່ອມສະພາບຂອງ chlorophyll ແລະ ເພີ່ມປະສິດທິພາບການໃຊ້ນ້ຳ ແລະ ຜົນຜະລິດ quantum ສູງສຸດຂອງ photochemistry PSII ໃນຕົ້ນພາຍໃຕ້ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ (Holá et al., 2010; Toussagunpanit et al., 2015).
ເນື່ອງຈາກການປ່ຽນແປງຂອງດິນຟ້າອາກາດ ແລະ ການປ່ຽນແປງ, ພືດເຂົ້າຕ້ອງປະເຊີນກັບໄລຍະເວລາທີ່ມີອຸນຫະພູມປະຈໍາວັນສູງ (Lesk et al., 2016; Garcés, 2020; Federarroz (Federación Nacional de Arroceros), 2021). ໃນ phenotyping ພືດ, ການນໍາໃຊ້ phytonutrients ຫຼື biostimulants ໄດ້ຖືກສຶກສາເປັນຍຸດທະສາດເພື່ອຫຼຸດຜ່ອນຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນໃນພື້ນທີ່ປູກເຂົ້າ (Alvarado-Sanabria et al., 2017; Calderón-Páez et al., 2021; Quintero-Calderón et al., 2017). ນອກຈາກນັ້ນ, ການນໍາໃຊ້ຕົວແປທາງຊີວະເຄມີ ແລະ ສະລີລະວິທະຍາ (ອຸນຫະພູມໃບ, ການນໍາໄຟຟ້າຂອງປາກໃບ, ຕົວກໍານົດການຟຼູອໍເຣສເຊັນຂອງຄໍໂລຟິວ, ປະລິມານຄໍໂລຟິວ ແລະ ນໍ້າທີ່ກ່ຽວຂ້ອງ, malondialdehyde ແລະ ການສັງເຄາະໂປຣລີນ) ເປັນເຄື່ອງມືທີ່ເຊື່ອຖືໄດ້ສໍາລັບການກວດກາຕົ້ນເຂົ້າພາຍໃຕ້ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນໃນທ້ອງຖິ່ນ ແລະ ສາກົນ (Sánchez -Reynoso et al., 2014; Alvarado-Sanabria et al., 2017; ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ການຄົ້ນຄວ້າກ່ຽວກັບການນໍາໃຊ້ການສີດພົ່ນຮໍໂມນພືດທາງໃບໃນເຂົ້າໃນລະດັບທ້ອງຖິ່ນຍັງຫາຍາກ. ດັ່ງນັ້ນ, ການສຶກສາກ່ຽວກັບປະຕິກິລິຍາທາງສະລີລະວິທະຍາ ແລະ ຊີວະເຄມີຂອງການນໍາໃຊ້ຕົວຄວບຄຸມການເຕີບໂຕຂອງພືດແມ່ນມີຄວາມສໍາຄັນຫຼາຍສໍາລັບການສະເໜີຍຸດທະສາດດ້ານກະສິກຳທີ່ໃຊ້ໄດ້ຈິງສໍາລັບສິ່ງນີ້. ການແກ້ໄຂຜົນກະທົບທາງລົບຂອງໄລຍະເວລາຂອງຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນທີ່ສັບສົນໃນເຂົ້າ. ດັ່ງນັ້ນ, ຈຸດປະສົງຂອງການສຶກສານີ້ແມ່ນເພື່ອປະເມີນຜົນກະທົບທາງສະລີລະວິທະຍາ (ການນໍາໄຟຟ້າຂອງປາກໃບ, ຕົວກໍານົດການຟຼູອໍເຣສເຊັນຂອງຄໍໂລຟິວ ແລະ ປະລິມານນໍ້າທີ່ກ່ຽວຂ້ອງ) ແລະ ຜົນກະທົບທາງຊີວະເຄມີຂອງການນໍາໃຊ້ຕົວຄວບຄຸມການເຕີບໂຕຂອງພືດສີ່ຊະນິດ (AUX, CK, GA ແລະ BR). (ເມັດສີສັງເຄາະແສງ, malondialdehyde ແລະ ປະລິມານໂປຣລີນ) ຕົວແປໃນ ພັນທຸກໍາເຂົ້າສອງຊະນິດທີ່ໄດ້ຮັບຜົນກະທົບຈາກຄວາມຮ້ອນລວມ (ອຸນຫະພູມກາງເວັນ/ກາງຄືນສູງ).
ໃນການສຶກສາຄັ້ງນີ້, ການທົດລອງສອງຄັ້ງທີ່ເປັນອິດສະຫຼະໄດ້ຖືກປະຕິບັດ. genotypes Federrose 67 (F67: genotype ທີ່ພັດທະນາໃນອຸນຫະພູມສູງໃນໄລຍະທົດສະວັດທີ່ຜ່ານມາ) ແລະ Federrose 2000 (F2000: genotype ທີ່ພັດທະນາໃນທົດສະວັດສຸດທ້າຍຂອງສະຕະວັດທີ 20 ທີ່ສະແດງໃຫ້ເຫັນຄວາມຕ້ານທານຕໍ່ໄວຣັດໃບຂາວ) ໄດ້ຖືກນໍາໃຊ້ເປັນຄັ້ງທໍາອິດ. ແກ່ນ. ແລະການທົດລອງຄັ້ງທີສອງ, ຕາມລໍາດັບ. genotypes ທັງສອງແມ່ນປູກຢ່າງກວ້າງຂວາງໂດຍຊາວກະສິກອນໂຄລໍາເບຍ. ແກ່ນໄດ້ຖືກຫວ່ານໃນຖາດ 10 ລິດ (ຍາວ 39.6 ຊມ, ກວ້າງ 28.8 ຊມ, ສູງ 16.8 ຊມ) ທີ່ມີດິນຊາຍທີ່ມີສານອິນຊີ 2%. ເມັດພືດທີ່ງອກກ່ອນຫ້າເມັດໄດ້ຖືກປູກໃນແຕ່ລະຖາດ. ພາເລັດໄດ້ຖືກວາງໄວ້ໃນເຮືອນແກ້ວຂອງຄະນະວິທະຍາສາດກະສິກໍາຂອງມະຫາວິທະຍາໄລແຫ່ງຊາດໂຄລໍາເບຍ, ວິທະຍາເຂດ Bogotá (43°50′56″ N, 74°04′051″ W), ໃນລະດັບຄວາມສູງ 2556 ແມັດຈາກລະດັບນໍ້າທະເລ (asl). ມ.) ແລະ ໄດ້ດຳເນີນໄປຕັ້ງແຕ່ເດືອນຕຸລາ ຫາ ເດືອນທັນວາ 2019. ການທົດລອງໜຶ່ງຄັ້ງ (Federroz 67) ແລະ ການທົດລອງຄັ້ງທີສອງ (Federroz 2000) ໃນລະດູການດຽວກັນຂອງປີ 2020.
ສະພາບແວດລ້ອມໃນເຮືອນແກ້ວໃນແຕ່ລະລະດູການປູກມີດັ່ງນີ້: ອຸນຫະພູມກາງເວັນ ແລະ ກາງຄືນ 30/25°C, ຄວາມຊຸ່ມຊື່ນສຳພັດ 60~80%, ໄລຍະເວລາແສງທຳມະຊາດ 12 ຊົ່ວໂມງ (ລັງສີສັງເຄາະແສງ 1500 µmol (ໂຟຕອນ) m-2 s-). 1 ຕອນທ່ຽງ). ພືດໄດ້ຖືກໃສ່ປຸ໋ຍຕາມປະລິມານຂອງແຕ່ລະອົງປະກອບ 20 ມື້ຫຼັງຈາກການງອກຂອງເມັດ (DAE), ອີງຕາມ Sánchez-Reinoso et al. (2019): ໄນໂຕຣເຈນ 670 ມກ ຕໍ່ຕົ້ນ, ຟອສຟໍຣັດ 110 ມກ ຕໍ່ຕົ້ນ, ໂພແທດຊຽມ 350 ມກ ຕໍ່ຕົ້ນ, ແຄວຊຽມ 68 ມກ ຕໍ່ຕົ້ນ, ແມກນີຊຽມ 20 ມກ ຕໍ່ຕົ້ນ, ຊູນຟູຣິກ 20 ມກ ຕໍ່ຕົ້ນ, ຊິລິກອນ 17 ມກ ຕໍ່ຕົ້ນ. ພືດມີໂບຣອນ 10 ມກ ຕໍ່ຕົ້ນ, ທອງແດງ 17 ມກ ຕໍ່ຕົ້ນ, ແລະ ສັງກະສີ 44 ມກ ຕໍ່ຕົ້ນ. ຕົ້ນເຂົ້າໄດ້ຖືກຮັກສາໄວ້ທີ່ສູງເຖິງ 47 DAE ໃນແຕ່ລະການທົດລອງເມື່ອພວກມັນບັນລຸໄລຍະ phenological V5 ໃນໄລຍະນີ້. ການສຶກສາທີ່ຜ່ານມາໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າຂັ້ນຕອນ phenological ນີ້ແມ່ນເວລາທີ່ເໝາະສົມທີ່ຈະດໍາເນີນການສຶກສາຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນໃນເຂົ້າ (Sánchez-Reinoso et al., 2014; Alvarado-Sanabria et al., 2017).
ໃນແຕ່ລະການທົດລອງ, ໄດ້ມີການໃຊ້ສານຄວບຄຸມການຈະເລີນເຕີບໂຕຂອງໃບສອງຄັ້ງແຍກຕ່າງຫາກ. ຊຸດການສີດພົ່ນຮໍໂມນໄຟໂຕທາງໃບຊຸດທຳອິດໄດ້ຖືກນຳໃຊ້ 5 ມື້ກ່ອນການປິ່ນປົວດ້ວຍຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ (42 DAE) ເພື່ອກະກຽມຕົ້ນໄມ້ໃຫ້ຮັບມືກັບຄວາມກົດດັນດ້ານສິ່ງແວດລ້ອມ. ຫຼັງຈາກນັ້ນ, ການສີດພົ່ນທາງໃບຄັ້ງທີສອງໄດ້ຖືກໃຫ້ 5 ມື້ຫຼັງຈາກຕົ້ນໄມ້ໄດ້ຮັບຄວາມກົດດັນ (52 DAE). ຮໍໂມນໄຟໂຕສີ່ຊະນິດໄດ້ຖືກນຳໃຊ້ ແລະ ຄຸນສົມບັດຂອງສ່ວນປະກອບທີ່ມີການເຄື່ອນໄຫວແຕ່ລະຊະນິດທີ່ຖືກສີດພົ່ນໃນການສຶກສານີ້ແມ່ນລະບຸໄວ້ໃນຕາຕະລາງເສີມ 1. ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງສານຄວບຄຸມການຈະເລີນເຕີບໂຕຂອງໃບທີ່ໃຊ້ມີດັ່ງນີ້: (i) ອອກຊິນ (ກົດ 1-ແນບທີລາເຊຕິກ: NAA) ທີ່ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນ 5 × 10−5 M (ii) ຈິບເບເຣວລິນ 5 × 10–5 M (ກົດຈິບເບເຣວລິກ: NAA); GA3); (iii) ໄຊໂຕໄຄນິນ (trans-zeatin) 1 × 10-5 M (iv) Brassinosteroids [Spirostan-6-one, 3,5-dihydroxy-, (3b,5a,25R)] 5 × 10-5; M. ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນເຫຼົ່ານີ້ໄດ້ຖືກເລືອກເພາະວ່າມັນກະຕຸ້ນການຕອບສະໜອງໃນທາງບວກ ແລະ ເພີ່ມຄວາມຕ້ານທານຂອງພືດຕໍ່ກັບຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ (Zahir et al., 2001; Wen et al., 2010; El-Bassiony et al., 2012; Salehifar et al., 2017). ຕົ້ນເຂົ້າທີ່ບໍ່ມີຢາສີດຄວບຄຸມການຈະເລີນເຕີບໂຕຂອງພືດໄດ້ຮັບການປະຕິບັດດ້ວຍນ້ຳກັ່ນເທົ່ານັ້ນ. ຕົ້ນເຂົ້າທັງໝົດໄດ້ຖືກສີດດ້ວຍເຄື່ອງສີດມື. ໃຊ້ນ້ຳ 20 ml ໃສ່ຕົ້ນເພື່ອໃຫ້ຄວາມຊຸ່ມຊື່ນແກ່ໜ້າຜິວດ້ານເທິງ ແລະ ດ້ານລຸ່ມຂອງໃບ. ຢາສີດທາງໃບທັງໝົດໃຊ້ສານເສີມກະສິກຳ (Agrotin, Bayer CropScience, Colombia) ໃນຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນ 0.1% (v/v). ໄລຍະຫ່າງລະຫວ່າງກະຖາງ ແລະ ເຄື່ອງສີດແມ່ນ 30 ຊມ.
ການປິ່ນປົວດ້ວຍຄວາມຮ້ອນໄດ້ຖືກປະຕິບັດ 5 ມື້ຫຼັງຈາກການສີດພົ່ນທາງໃບຄັ້ງທຳອິດ (47 DAE) ໃນແຕ່ລະການທົດລອງ. ຕົ້ນເຂົ້າໄດ້ຖືກຍ້າຍຈາກເຮືອນແກ້ວໄປຫາຫ້ອງປູກພືດຂະໜາດ 294 ລິດ (MLR-351H, Sanyo, IL, USA) ເພື່ອສ້າງຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ ຫຼື ຮັກສາສະພາບແວດລ້ອມຄືເກົ່າ (47 DAE). ການປິ່ນປົວດ້ວຍຄວາມຮ້ອນປະສົມປະສານໄດ້ຖືກປະຕິບັດໂດຍການຕັ້ງຄ່າຫ້ອງໃຫ້ມີອຸນຫະພູມກາງເວັນ/ກາງຄືນດັ່ງຕໍ່ໄປນີ້: ອຸນຫະພູມສູງສຸດໃນຕອນກາງເວັນ [40°C ເປັນເວລາ 5 ຊົ່ວໂມງ (ຕັ້ງແຕ່ 11:00 ຫາ 16:00)] ແລະ ໄລຍະເວລາກາງຄືນ [30°C ເປັນເວລາ 5 ຊົ່ວໂມງ]. 8 ມື້ຕິດຕໍ່ກັນ (ຕັ້ງແຕ່ 19:00 ຫາ 24:00). ອຸນຫະພູມຄວາມກົດດັນ ແລະ ເວລາການສຳຜັດໄດ້ຖືກເລືອກໂດຍອີງໃສ່ການສຶກສາກ່ອນໜ້ານີ້ (Sánchez-Reynoso et al. 2014; Alvarado-Sanabría et al. 2017). ໃນທາງກົງກັນຂ້າມ, ກຸ່ມພືດທີ່ຖືກຍ້າຍໄປຫ້ອງປູກໄດ້ຖືກເກັບຮັກສາໄວ້ໃນເຮືອນແກ້ວທີ່ອຸນຫະພູມດຽວກັນ (30°C ໃນເວລາກາງເວັນ/25°C ໃນຕອນກາງຄືນ) ເປັນເວລາ 8 ມື້ຕິດຕໍ່ກັນ.
ໃນຕອນທ້າຍຂອງການທົດລອງ, ກຸ່ມການປິ່ນປົວຕໍ່ໄປນີ້ໄດ້ຮັບ: (i) ເງື່ອນໄຂອຸນຫະພູມການຈະເລີນເຕີບໂຕ + ການໃຊ້ນໍ້າກັ່ນ [ການຄວບຄຸມຢ່າງແທ້ຈິງ (AC)], (ii) ເງື່ອນໄຂຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ + ການໃຊ້ນໍ້າກັ່ນ [ການຄວບຄຸມຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ (SC)], (iii) ເງື່ອນໄຂ ເງື່ອນໄຂຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ + ການໃຊ້ອົກຊິນ (AUX), (iv) ເງື່ອນໄຂຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ + ການໃຊ້ຈິບເບເຣລລິນ (GA), (v) ເງື່ອນໄຂຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ + ການໃຊ້ໄຊໂຕໄຄນິນ (CK), ແລະ (vi) ເງື່ອນໄຂຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ + ບຣາສຊີໂນສະເຕີຣອຍ (BR) ພາກຜະນວກ. ກຸ່ມການປິ່ນປົວເຫຼົ່ານີ້ໄດ້ຖືກນໍາໃຊ້ສໍາລັບສອງ genotypes (F67 ແລະ F2000). ການປິ່ນປົວທັງໝົດໄດ້ຖືກປະຕິບັດໃນການອອກແບບແບບສຸ່ມຢ່າງສົມບູນດ້ວຍຫ້າຊ້ຳ, ແຕ່ລະອັນປະກອບດ້ວຍພືດໜຶ່ງຕົ້ນ. ແຕ່ລະຕົ້ນຖືກນໍາໃຊ້ເພື່ອອ່ານຕົວແປທີ່ກໍານົດໃນຕອນທ້າຍຂອງການທົດລອງ. ການທົດລອງໃຊ້ເວລາ 55 DAE.
ຄວາມນຳໄຟຟ້າຂອງປາກໃບ (gs) ໄດ້ຖືກວັດແທກໂດຍໃຊ້ເຄື່ອງວັດແທກຄວາມพรຸນແບບພົກພາ (SC-1, METER Group Inc., USA) ທີ່ມີຄ່າຕັ້ງແຕ່ 0 ຫາ 1000 mmol m-2 s-1, ມີຮູຮັບແສງຂອງຫ້ອງຕົວຢ່າງ 6.35 ມມ. ການວັດແທກແມ່ນເຮັດໂດຍການຕິດໂພຣບປາກໃບໃສ່ກັບໃບທີ່ສຸກແລ້ວທີ່ມີໜໍ່ຫຼັກຂອງຕົ້ນໄມ້ຂະຫຍາຍອອກເຕັມທີ່. ສຳລັບແຕ່ລະການປິ່ນປົວ, ການອ່ານ gs ໄດ້ຖືກບັນທຶກໃນສາມໃບຂອງແຕ່ລະຕົ້ນໄມ້ລະຫວ່າງ 11:00 ແລະ 16:00 ແລະຄິດໄລ່ໂດຍສະເລ່ຍ.
RWC ໄດ້ຖືກກຳນົດຕາມວິທີການທີ່ໄດ້ອະທິບາຍໂດຍ Ghoulam et al. (2002). ແຜ່ນທີ່ຂະຫຍາຍເຕັມທີ່ໃຊ້ເພື່ອກຳນົດ g ຍັງຖືກນຳໃຊ້ເພື່ອວັດແທກ RWC. ນ້ຳໜັກສົດ (FW) ໄດ້ຖືກກຳນົດທັນທີຫຼັງຈາກເກັບກ່ຽວໂດຍໃຊ້ເຄື່ອງຊັ່ງດິຈິຕອນ. ຫຼັງຈາກນັ້ນ, ໃບໄດ້ຖືກວາງໄວ້ໃນພາຊະນະພາດສະຕິກທີ່ເຕັມໄປດ້ວຍນ້ຳ ແລະ ປະໄວ້ໃນຄວາມມືດທີ່ອຸນຫະພູມຫ້ອງ (22°C) ເປັນເວລາ 48 ຊົ່ວໂມງ. ຈາກນັ້ນ, ຊັ່ງນ້ຳໜັກໃສ່ເຄື່ອງຊັ່ງດິຈິຕອນ ແລະ ບັນທຶກນ້ຳໜັກທີ່ຂະຫຍາຍອອກ (TW). ໃບທີ່ໃຄ່ບວມໄດ້ຖືກອົບແຫ້ງທີ່ອຸນຫະພູມ 75°C ເປັນເວລາ 48 ຊົ່ວໂມງ ແລະ ນ້ຳໜັກແຫ້ງ (DW) ຂອງມັນຖືກບັນທຶກໄວ້.
ປະລິມານຄລໍໂຣຟິວທີ່ກ່ຽວຂ້ອງໄດ້ຖືກກຳນົດໂດຍໃຊ້ເຄື່ອງວັດແທກຄລໍໂຣຟິວ (atLeafmeter, FT Green LLC, USA) ແລະສະແດງອອກໃນຫົວໜ່ວຍ atLeaf (Dey et al., 2016). ການອ່ານປະສິດທິພາບຄວອນຕຳສູງສຸດ PSII (ອັດຕາສ່ວນ Fv/Fm) ໄດ້ຖືກບັນທຶກໄວ້ໂດຍໃຊ້ເຄື່ອງວັດແທກຄລໍໂຣຟິວແບບກະຕຸ້ນຢ່າງຕໍ່ເນື່ອງ (Handy PEA, Hansatech Instruments, UK). ໃບໄດ້ຖືກປັບໃຫ້ມືດໂດຍໃຊ້ທີ່ໜີບໃບເປັນເວລາ 20 ນາທີກ່ອນການວັດແທກ Fv/Fm (Restrepo-Diaz ແລະ Garces-Varon, 2013). ຫຼັງຈາກໃບໄດ້ປັບຕົວໃຫ້ມືດແລ້ວ, ການວັດແທກພື້ນຖານ (F0) ແລະ ການຟລູອໍເຣສເຊັນສູງສຸດ (Fm) ໄດ້ຖືກວັດແທກ. ຈາກຂໍ້ມູນເຫຼົ່ານີ້, ການຟຼູອໍເຣສເຊັນທີ່ປ່ຽນແປງໄດ້ (Fv = Fm – F0), ອັດຕາສ່ວນຂອງການຟຼູອໍເຣສເຊັນທີ່ປ່ຽນແປງໄດ້ຕໍ່ການຟຼູອໍເຣສເຊັນສູງສຸດ (Fv/Fm), ຜົນຜະລິດຄວອນຕຳສູງສຸດຂອງໂຟໂຕເຄມີ PSII (Fv/F0) ແລະ ອັດຕາສ່ວນ Fm/F0 ໄດ້ຖືກຄິດໄລ່ (Baker, 2008; Lee et al. ., 2017). ການອ່ານຄ່າຄລໍໂຣຟິວ ແລະ ການຟຼູອໍເຣສເຊັນຂອງຄລໍໂຣຟິວທີ່ກ່ຽວຂ້ອງໄດ້ຖືກບັນທຶກໄວ້ໃນໃບດຽວກັນທີ່ໃຊ້ສຳລັບການວັດແທກ gs.
ນ້ຳໜັກໃບສົດປະມານ 800 ມກ ໄດ້ຖືກເກັບມາເປັນຕົວແປທາງຊີວະເຄມີ. ຫຼັງຈາກນັ້ນ, ຕົວຢ່າງໃບໄດ້ຖືກເຮັດໃຫ້ເປັນເອກະພາບໃນໄນໂຕຣເຈນແຫຼວ ແລະ ເກັບຮັກສາໄວ້ເພື່ອການວິເຄາະຕື່ມອີກ. ວິທີການສະເປກໂຕຣມິກທີ່ໃຊ້ເພື່ອປະເມີນປະລິມານຄລໍໂຣຟິວ a, b ແລະ ແຄໂຣທີນອຍຂອງເນື້ອເຍື່ອແມ່ນອີງໃສ່ວິທີການ ແລະ ສົມຜົນທີ່ອະທິບາຍໂດຍ Wellburn (1994). ຕົວຢ່າງເນື້ອເຍື່ອໃບ (30 ມກ) ໄດ້ຖືກເກັບມາ ແລະ ເຮັດໃຫ້ເປັນເອກະພາບໃນ 3 ມລ ຂອງອາເຊໂຕນ 80%. ຫຼັງຈາກນັ້ນ, ຕົວຢ່າງໄດ້ຖືກປั่นແຍກ (ຮຸ່ນ 420101, Becton Dickinson Primary Care Diagnostics, ສະຫະລັດອາເມລິກາ) ທີ່ 5000 rpm ເປັນເວລາ 10 ນາທີ ເພື່ອກຳຈັດອະນຸພາກ. ສານລະລາຍເທິງໜ້າດິນໄດ້ຖືກລະລາຍໃຫ້ມີປະລິມານສຸດທ້າຍ 6 ມລ ໂດຍການຕື່ມອາເຊໂຕນ 80% (Sims ແລະ Gamon, 2002). ປະລິມານຂອງຄລໍໂຣຟິວໄດ້ຖືກກຳນົດຢູ່ທີ່ 663 (ຄລໍໂຣຟິວ a) ແລະ 646 (ຄລໍໂຣຟິວ b) nm, ແລະ ແຄໂຣທີນອຍທີ່ 470 nm ໂດຍໃຊ້ເຄື່ອງວັດແທກສະເປກໂຕຣໂຟໂຕມິເຕີ (Spectronic BioMate 3 UV-vis, Thermo, ສະຫະລັດອາເມລິກາ).
ວິທີການກົດ thiobarbituric (TBA) ທີ່ອະທິບາຍໂດຍ Hodges et al. (1999) ໄດ້ຖືກນໍາໃຊ້ເພື່ອປະເມີນການຜຸພັງຂອງໄຂມັນໃນເຍື່ອຫຸ້ມເຊລ (MDA). ປະມານ 0.3 g ຂອງເນື້ອເຍື່ອໃບຍັງໄດ້ຖືກປະສົມເຂົ້າກັນໃນໄນໂຕຣເຈນແຫຼວ. ຕົວຢ່າງໄດ້ຖືກປั่นແຍກທີ່ 5000 rpm ແລະການວັດແທກການດູດຊຶມໃນເຄື່ອງວັດແທກສະເປກໂຕຣໂຟໂຕມິເຕີທີ່ 440, 532 ແລະ 600 nm. ສຸດທ້າຍ, ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງ MDA ໄດ້ຖືກຄິດໄລ່ໂດຍໃຊ້ສໍາປະສິດການສູນເສຍ (157 M mL−1).
ປະລິມານໂປຣລີນຂອງການປິ່ນປົວທັງໝົດໄດ້ຖືກກຳນົດໂດຍໃຊ້ວິທີການທີ່ໄດ້ອະທິບາຍໂດຍ Bates et al. (1973). ຕື່ມສານລະລາຍອາຊິດຊູນໂຟຊາລີຊີລິກ 3% ຈຳນວນ 10 ມລ ໃສ່ຕົວຢ່າງທີ່ເກັບໄວ້ ແລະ ກັ່ນຕອງຜ່ານເຈ້ຍກອງ Whatman (ໝາຍເລກ 2). ຫຼັງຈາກນັ້ນ, ສານລະລາຍນີ້ 2 ມລ ໄດ້ຖືກປະຕິກິລິຍາກັບອາຊິດນິນໄຮດຣິກ 2 ມລ ແລະ ອາຊິດອາເຊຕິກກ້ອນ 2 ມລ. ສ່ວນປະສົມດັ່ງກ່າວໄດ້ຖືກວາງໄວ້ໃນອ່າງນ້ຳທີ່ອຸນຫະພູມ 90°C ເປັນເວລາ 1 ຊົ່ວໂມງ. ຢຸດປະຕິກິລິຍາໂດຍການບົ່ມໃສ່ນ້ຳກ້ອນ. ສັ່ນທໍ່ຢ່າງແຮງໂດຍໃຊ້ເຄື່ອງສັ່ນ vortex ແລະ ລະລາຍສານລະລາຍທີ່ໄດ້ຮັບໃນ toluene 4 ມລ. ການອ່ານຄ່າການດູດຊຶມໄດ້ຖືກກຳນົດຢູ່ທີ່ 520 nm ໂດຍໃຊ້ເຄື່ອງວັດແທກສະເປກໂຕຣໂຟໂຕມິເຕີດຽວກັນທີ່ໃຊ້ສຳລັບການວັດປະລິມານເມັດສີສັງເຄາະແສງ (Spectronic BioMate 3 UV-Vis, Thermo, Madison, WI, USA).
ວິທີການທີ່ໄດ້ອະທິບາຍໂດຍ Gerhards et al. (2016) ເພື່ອຄິດໄລ່ອຸນຫະພູມເຮືອນຍອດ ແລະ CSI. ຮູບຖ່າຍຄວາມຮ້ອນໄດ້ຖືກຖ່າຍດ້ວຍກ້ອງຖ່າຍຮູບ FLIR 2 (FLIR Systems Inc., Boston, MA, USA) ດ້ວຍຄວາມຖືກຕ້ອງ ±2°C ໃນຕອນທ້າຍຂອງໄລຍະເວລາຄວາມກົດດັນ. ວາງພື້ນຜິວສີຂາວຢູ່ທາງຫຼັງຕົ້ນໄມ້ເພື່ອຖ່າຍຮູບ. ອີກເທື່ອໜຶ່ງ, ໂຮງງານສອງແຫ່ງໄດ້ຖືກພິຈາລະນາເປັນແບບຈຳລອງອ້າງອີງ. ຕົ້ນໄມ້ໄດ້ຖືກວາງໄວ້ເທິງພື້ນຜິວສີຂາວ; ໜຶ່ງແຫ່ງຖືກເຄືອບດ້ວຍສານເສີມກະສິກຳ (Agrotin, Bayer CropScience, Bogotá, Colombia) ເພື່ອຈຳລອງການເປີດຂອງປາກໃບທັງໝົດ [ໂໝດປຽກ (Twet)], ແລະອີກແຫ່ງໜຶ່ງແມ່ນໃບໄມ້ທີ່ບໍ່ມີການນຳໃຊ້ໃດໆ [ໂໝດແຫ້ງ (Tdry)] (Castro -Duque et al., 2020). ໄລຍະຫ່າງລະຫວ່າງກ້ອງຖ່າຍຮູບ ແລະ ໝໍ້ໃນລະຫວ່າງການຖ່າຍພາບແມ່ນ 1 ແມັດ.
ດັດຊະນີຄວາມທົນທານທຽບເທົ່າໄດ້ຖືກຄິດໄລ່ໂດຍທາງອ້ອມໂດຍໃຊ້ຄວາມນຳໄຟຟ້າຂອງປາກໃບ (gs) ຂອງພືດທີ່ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວເມື່ອທຽບກັບພືດຄວບຄຸມ (ພືດທີ່ບໍ່ມີການປິ່ນປົວດ້ວຍຄວາມກົດດັນ ແລະ ມີຕົວຄວບຄຸມການຈະເລີນເຕີບໂຕທີ່ໃຊ້) ເພື່ອກຳນົດຄວາມທົນທານຂອງ genotypes ທີ່ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວທີ່ໄດ້ປະເມີນໃນການສຶກສານີ້. RTI ໄດ້ຮັບໂດຍໃຊ້ສົມຜົນທີ່ດັດແປງມາຈາກ Chávez-Arias et al. (2020).
ໃນແຕ່ລະການທົດລອງ, ຕົວແປທາງສະລີລະວິທະຍາທັງໝົດທີ່ໄດ້ກ່າວມາຂ້າງເທິງໄດ້ຖືກກຳນົດ ແລະ ບັນທຶກໄວ້ທີ່ 55 DAE ໂດຍໃຊ້ໃບທີ່ຂະຫຍາຍອອກຢ່າງເຕັມທີ່ທີ່ເກັບມາຈາກເຮືອນຍອດດ້ານເທິງ. ນອກຈາກນັ້ນ, ການວັດແທກໄດ້ຖືກປະຕິບັດຢູ່ໃນຫ້ອງເຕີບໃຫຍ່ເພື່ອຫຼີກເວັ້ນການປ່ຽນແປງສະພາບແວດລ້ອມທີ່ພືດເຕີບໃຫຍ່.
ຂໍ້ມູນຈາກການທົດລອງຄັ້ງທຳອິດ ແລະ ຄັ້ງທີສອງໄດ້ຖືກວິເຄາະຮ່ວມກັນເປັນຊຸດຂອງການທົດລອງ. ແຕ່ລະກຸ່ມທົດລອງປະກອບດ້ວຍຕົ້ນໄມ້ 5 ຕົ້ນ, ແລະ ແຕ່ລະຕົ້ນປະກອບເປັນຫົວໜ່ວຍທົດລອງ. ການວິເຄາະຄວາມແปรປ່ວນ (ANOVA) ໄດ້ຖືກປະຕິບັດ (P ≤ 0.05). ເມື່ອກວດພົບຄວາມແຕກຕ່າງທີ່ສຳຄັນ, ການທົດສອບປຽບທຽບ post hoc ຂອງ Tukey ໄດ້ຖືກນຳໃຊ້ທີ່ P ≤ 0.05. ໃຊ້ຟັງຊັນ arcsine ເພື່ອປ່ຽນຄ່າເປີເຊັນ. ຂໍ້ມູນໄດ້ຖືກວິເຄາະໂດຍໃຊ້ຊອບແວ Statistix v 9.0 (ຊອບແວວິເຄາະ, Tallahassee, FL, USA) ແລະ ວາງແຜນໂດຍໃຊ້ SigmaPlot (ເວີຊັນ 10.0; ຊອບແວ Systat, San Jose, CA, USA). ການວິເຄາະອົງປະກອບຫຼັກໄດ້ຖືກປະຕິບັດໂດຍໃຊ້ຊອບແວ InfoStat 2016 (ຊອບແວວິເຄາະ, ມະຫາວິທະຍາໄລແຫ່ງຊາດ Cordoba, ອາເຈນຕິນາ) ເພື່ອລະບຸຕົວຄວບຄຸມການຈະເລີນເຕີບໂຕຂອງພືດທີ່ດີທີ່ສຸດພາຍໃຕ້ການສຶກສາ.
ຕາຕະລາງທີ 1 ສະຫຼຸບ ANOVA ທີ່ສະແດງໃຫ້ເຫັນການທົດລອງ, ວິທີການປິ່ນປົວທີ່ແຕກຕ່າງກັນ, ແລະ ການພົວພັນຂອງມັນກັບເມັດສີສັງເຄາະແສງຂອງໃບ (chlorophyll a, b, ທັງໝົດ, ແລະ carotenoids), malondialdehyde (MDA) ແລະ ປະລິມານ proline, ແລະ ຄວາມນຳໄຟຟ້າຂອງປາກໃບ. ຜົນກະທົບຂອງ gs, ປະລິມານນ້ຳທຽບເທົ່າ. (RWC), ປະລິມານ chlorophyll, ພາລາມິເຕີການຟຼູອໍເຣສເຊັນຂອງ chlorophyll alpha, ອຸນຫະພູມເຮືອນຍອດ (PCT) (°C), ດັດຊະນີຄວາມກົດດັນຂອງພືດ (CSI) ແລະ ດັດຊະນີຄວາມທົນທານທຽບເທົ່າຂອງຕົ້ນເຂົ້າທີ່ 55 DAE.
ຕາຕະລາງທີ 1. ສະຫຼຸບຂໍ້ມູນ ANOVA ກ່ຽວກັບຕົວແປທາງສະລີລະວິທະຍາ ແລະ ຊີວະເຄມີຂອງເຂົ້າລະຫວ່າງການທົດລອງ (ຈີໂນໄທບ໌) ແລະ ການປິ່ນປົວດ້ວຍຄວາມຮ້ອນ.
ຄວາມແຕກຕ່າງ (P≤0.01) ໃນການພົວພັນກັນຂອງເມັດສີໃນການສັງເຄາະແສງຂອງໃບ, ປະລິມານຄລໍໂຣຟິວທຽບເທົ່າ (ການອ່ານ Atleafe), ແລະຕົວກໍານົດການຟລູອໍເຣສເຊັນຂອງອັລຟາ-ຄລໍໂຣຟິວລະຫວ່າງການທົດລອງ ແລະ ການປິ່ນປົວແມ່ນສະແດງຢູ່ໃນຕາຕະລາງທີ 2. ອຸນຫະພູມກາງເວັນ ແລະ ກາງຄືນທີ່ສູງເຮັດໃຫ້ປະລິມານຄລໍໂຣຟິວ ແລະ ແຄໂຣທີນອຍທັງໝົດເພີ່ມຂຶ້ນ. ຕົ້ນເຂົ້າທີ່ບໍ່ໄດ້ຮັບການສີດພົ່ນຮໍໂມນໄຟໂຕຣໂມນໃສ່ທາງໃບ (2.36 ມກ g-1 ສຳລັບ “F67″ ແລະ 2.56 ມກ g-1 ສຳລັບ “F2000″) ເມື່ອທຽບກັບພືດທີ່ປູກພາຍໃຕ້ເງື່ອນໄຂອຸນຫະພູມທີ່ດີທີ່ສຸດ (2.67 ມກ g-1)) ສະແດງໃຫ້ເຫັນປະລິມານຄລໍໂຣຟິວທັງໝົດຕ່ຳກວ່າ. ໃນທັງສອງການທົດລອງ, “F67” ແມ່ນ 2.80 ມກ g-1 ແລະ “F2000” ແມ່ນ 2.80 ມກ g-1. ນອກຈາກນັ້ນ, ຕົ້ນເຂົ້າທີ່ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວດ້ວຍການສີດພົ່ນ AUX ແລະ GA ຮ່ວມກັນພາຍໃຕ້ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນຍັງສະແດງໃຫ້ເຫັນການຫຼຸດລົງຂອງປະລິມານຄລໍໂຣຟິວໃນທັງສອງ genotypes (AUX = 1.96 mg g-1 ແລະ GA = 1.45 mg g-1 ສຳລັບ “F67”; AUX = 1.96 mg g-1 ແລະ GA = 1.45 mg g-1 ສຳລັບ “F67″; AUX = 2.24 mg) g-1 ແລະ GA = 1.43 mg g-1 (ສຳລັບ “F2000″) ພາຍໃຕ້ເງື່ອນໄຂຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ. ພາຍໃຕ້ເງື່ອນໄຂຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ, ການປິ່ນປົວດ້ວຍທາງໃບດ້ວຍ BR ເຮັດໃຫ້ຕົວແປນີ້ເພີ່ມຂຶ້ນເລັກນ້ອຍໃນທັງສອງ genotypes. ສຸດທ້າຍ, ການສີດພົ່ນທາງໃບ CK ສະແດງໃຫ້ເຫັນຄ່າເມັດສີສັງເຄາະແສງສູງສຸດໃນບັນດາການປິ່ນປົວທັງໝົດ (ການປິ່ນປົວດ້ວຍ AUX, GA, BR, SC ແລະ AC) ໃນ genotypes F67 (3.24 mg g-1) ແລະ F2000 (3.65 mg g-1). ປະລິມານທີ່ກ່ຽວຂ້ອງຂອງ chlorophyll (ໜ່ວຍ Atleaf) ຍັງຫຼຸດລົງໂດຍຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນລວມ. ຄ່າສູງສຸດຍັງໄດ້ຖືກບັນທຶກໄວ້ໃນພືດທີ່ສີດພົ່ນດ້ວຍ CC ໃນທັງສອງ genotypes (41.66 ສຳລັບ “F67” ແລະ 49.30 ສຳລັບ “F2000”). ອັດຕາສ່ວນ Fv ແລະ Fv/Fm ສະແດງໃຫ້ເຫັນຄວາມແຕກຕ່າງທີ່ສຳຄັນລະຫວ່າງການປິ່ນປົວ ແລະ ແນວພັນ (ຕາຕະລາງທີ 2). ໂດຍລວມແລ້ວ, ໃນບັນດາຕົວແປເຫຼົ່ານີ້, ແນວພັນ F67 ມີຄວາມອ່ອນໄຫວຕໍ່ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນໜ້ອຍກວ່າແນວພັນ F2000. ອັດຕາສ່ວນ Fv ແລະ Fv/Fm ໄດ້ຮັບຜົນກະທົບຫຼາຍກວ່າໃນການທົດລອງຄັ້ງທີສອງ. ເບ້ຍໄມ້ 'F2000' ທີ່ມີຄວາມເຄັ່ງຕຶງທີ່ບໍ່ໄດ້ສີດພົ່ນດ້ວຍ phytohormones ໃດໆມີຄ່າ Fv ຕ່ຳສຸດ (2120.15) ແລະ ອັດຕາສ່ວນ Fv/Fm (0.59), ແຕ່ການສີດພົ່ນທາງໃບດ້ວຍ CK ຊ່ວຍຟື້ນຟູຄ່າເຫຼົ່ານີ້ (Fv: 2591, 89, ອັດຕາສ່ວນ Fv/Fm: 0.73). , ໄດ້ຮັບການອ່ານທີ່ຄ້າຍຄືກັນກັບທີ່ບັນທຶກໄວ້ໃນພືດ "F2000" ທີ່ປູກພາຍໃຕ້ເງື່ອນໄຂອຸນຫະພູມທີ່ດີທີ່ສຸດ (Fv: 2955.35, ອັດຕາສ່ວນ Fv/Fm: 0.73:0.72). ບໍ່ມີຄວາມແຕກຕ່າງທີ່ສຳຄັນໃນການເຍືອງແສງເບື້ອງຕົ້ນ (F0), ການເຍືອງແສງສູງສຸດ (Fm), ຜົນຜະລິດຄວອນຕຳທາງເຄມີແສງສູງສຸດຂອງ PSII (Fv/F0) ແລະ ອັດຕາສ່ວນ Fm/F0. ສຸດທ້າຍ, BR ສະແດງໃຫ້ເຫັນແນວໂນ້ມທີ່ຄ້າຍຄືກັນທີ່ສັງເກດເຫັນກັບ CK (Fv 2545.06, ອັດຕາສ່ວນ Fv/Fm 0.73).
ຕາຕະລາງທີ 2. ຜົນກະທົບຂອງຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນລວມ (40°/30°C ກາງເວັນ/ກາງຄືນ) ຕໍ່ເມັດສີສັງເຄາະແສງຂອງໃບ [ຜົນກະທົບຂອງຄໍໂລຟິວທັງໝົດ (Chl Total), ຄໍໂລຟິວ a (Chl a), ຄໍໂລຟິວ b (Chl b) ແລະ ແຄໂຣທີນອຍ Cx+c]], ປະລິມານຄໍໂລຟິວທຽບເທົ່າ (ຫົວໜ່ວຍ Atliff), ພາລາມິເຕີການເຍືອງແສງຂອງຄໍໂລຟິວ (ການເຍືອງແສງເບື້ອງຕົ້ນ (F0), ການເຍືອງແສງສູງສຸດ (Fm), ການເຍືອງແສງທີ່ປ່ຽນແປງໄດ້ (Fv), ປະສິດທິພາບ PSII ສູງສຸດ (Fv/Fm), ຜົນຜະລິດຄວອນຕຳສູງສຸດທາງແສງຂອງ PSII (Fv/F0) ແລະ Fm/F0 ໃນພືດຂອງສອງຈີໂນໄທບເຂົ້າ [Federrose 67 (F67) ແລະ Federrose 2000 (F2000)] 55 ມື້ຫຼັງຈາກການງອກ (DAE)).
ປະລິມານນ້ຳທຽບເທົ່າ (RWC) ຂອງຕົ້ນເຂົ້າທີ່ໄດ້ຮັບການປະຕິບັດທີ່ແຕກຕ່າງກັນສະແດງໃຫ້ເຫັນຄວາມແຕກຕ່າງ (P ≤ 0.05) ໃນການພົວພັນລະຫວ່າງການທົດລອງ ແລະ ການປະຕິບັດທາງໃບ (ຮູບທີ 1A). ເມື່ອໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວດ້ວຍ SA, ຄ່າຕໍ່າສຸດໄດ້ຖືກບັນທຶກໄວ້ສຳລັບທັງສອງ genotypes (74.01% ສຳລັບ F67 ແລະ 76.6% ສຳລັບ F2000). ພາຍໃຕ້ເງື່ອນໄຂຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ, RWC ຂອງຕົ້ນເຂົ້າຂອງທັງສອງ genotypes ທີ່ໄດ້ຮັບການປະຕິບັດດ້ວຍຮໍໂມນພືດທີ່ແຕກຕ່າງກັນເພີ່ມຂຶ້ນຢ່າງຫຼວງຫຼາຍ. ໂດຍລວມແລ້ວ, ການໃຊ້ CK, GA, AUX, ຫຼື BR ທາງໃບເພີ່ມ RWC ໃຫ້ຄ້າຍຄືກັບຄ່າຂອງຕົ້ນທີ່ປູກພາຍໃຕ້ເງື່ອນໄຂທີ່ດີທີ່ສຸດໃນລະຫວ່າງການທົດລອງ. ການຄວບຄຸມຢ່າງແທ້ຈິງ ແລະ ຕົ້ນທີ່ສີດພົ່ນທາງໃບໄດ້ບັນທຶກຄ່າປະມານ 83% ສຳລັບທັງສອງ genotypes. ໃນທາງກົງກັນຂ້າມ, gs ຍັງສະແດງໃຫ້ເຫັນຄວາມແຕກຕ່າງທີ່ສຳຄັນ (P ≤ 0.01) ໃນການພົວພັນລະຫວ່າງການທົດລອງ ແລະ ການປະຕິບັດ (ຮູບທີ 1B). ໂຮງງານເຂົ້າຄວບຄຸມຢ່າງແທ້ຈິງ (AC) ຍັງໄດ້ບັນທຶກຄ່າສູງສຸດສຳລັບແຕ່ລະ genotype (440.65 mmol m-2s-1 ສຳລັບ F67 ແລະ 511.02 mmol m-2s-1 ສຳລັບ F2000). ຕົ້ນເຂົ້າທີ່ຢູ່ພາຍໃຕ້ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນລວມພຽງຢ່າງດຽວສະແດງໃຫ້ເຫັນຄ່າ gs ຕໍ່າສຸດສຳລັບທັງສອງ genotype (150.60 mmol m-2s-1 ສຳລັບ F67 ແລະ 171.32 mmol m-2s-1 ສຳລັບ F2000). ການປິ່ນປົວດ້ວຍທາງໃບດ້ວຍຕົວຄວບຄຸມການຈະເລີນເຕີບໂຕຂອງພືດທັງໝົດຍັງເພີ່ມຂຶ້ນ g. ໃນຕົ້ນເຂົ້າ F2000 ທີ່ສີດດ້ວຍ CC, ຜົນກະທົບຂອງການສີດພົ່ນທາງໃບດ້ວຍຮໍໂມນພືດແມ່ນເຫັນໄດ້ຊັດເຈນກວ່າ. ກຸ່ມພືດນີ້ບໍ່ສະແດງໃຫ້ເຫັນຄວາມແຕກຕ່າງເມື່ອທຽບກັບພືດຄວບຄຸມຢ່າງແທ້ຈິງ (AC 511.02 ແລະ CC 499.25 mmol m-2s-1).
ຮູບທີ 1. ຜົນກະທົບຂອງຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນລວມ (40°/30°C ກາງເວັນ/ກາງຄືນ) ຕໍ່ປະລິມານນ້ຳທຽບເທົ່າ (RWC) (A), ການນຳໄຟຟ້າຂອງປາກໃບ (gs) (B), ການຜະລິດ malondialdehyde (MDA) (C), ແລະ ປະລິມານໂປຣລີນ. (D) ໃນພືດທີ່ມີສອງຈີໂນໄທບ໌ເຂົ້າ (F67 ແລະ F2000) ໃນເວລາ 55 ມື້ຫຼັງຈາກການງອກ (DAE). ການປິ່ນປົວທີ່ປະເມີນສຳລັບແຕ່ລະຈີໂນໄທບ໌ລວມມີ: ການຄວບຄຸມຢ່າງແທ້ຈິງ (AC), ການຄວບຄຸມຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ (SC), ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ + ອອກຊິນ (AUX), ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ + ກິບເບເຣລລິນ (GA), ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ + ໄມໂຕເຈນຂອງເຊວ (CK), ແລະ ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ + ບຣາສຊີໂນສະເຕີຣອຍ. (BR). ແຕ່ລະຖັນສະແດງຄ່າສະເລ່ຍ ± ຄວາມຜິດພາດມາດຕະຖານຂອງຫ້າຈຸດຂໍ້ມູນ (n = 5). ຖັນຕາມດ້ວຍຕົວອັກສອນທີ່ແຕກຕ່າງກັນຊີ້ບອກເຖິງຄວາມແຕກຕ່າງທີ່ມີນัยສຳຄັນທາງສະຖິຕິຕາມການທົດສອບຂອງ Tukey (P ≤ 0.05). ຕົວອັກສອນທີ່ມີເຄື່ອງໝາຍເທົ່າກັບຊີ້ບອກວ່າຄ່າສະເລ່ຍບໍ່ມີນัยສຳຄັນທາງສະຖິຕິ (≤ 0.05).
ເນື້ອໃນຂອງ MDA (P ≤ 0.01) ແລະ ໂປຣລີນ (P ≤ 0.01) ຍັງສະແດງໃຫ້ເຫັນຄວາມແຕກຕ່າງທີ່ສຳຄັນໃນການພົວພັນລະຫວ່າງການທົດລອງ ແລະ ການປິ່ນປົວດ້ວຍຮໍໂມນໄຟໂຕ (ຮູບທີ 1C, D). ການເພີ່ມຂຶ້ນຂອງການຜຸພັງຂອງໄຂມັນໄດ້ຖືກສັງເກດເຫັນດ້ວຍການປິ່ນປົວດ້ວຍ SC ໃນທັງສອງ genotypes (ຮູບທີ 1C), ແນວໃດກໍ່ຕາມພືດທີ່ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວດ້ວຍຢາສີດຄວບຄຸມການຈະເລີນເຕີບໂຕຂອງໃບສະແດງໃຫ້ເຫັນການຫຼຸດລົງຂອງການຜຸພັງຂອງໄຂມັນໃນທັງສອງ genotypes; ໂດຍທົ່ວໄປ, ການໃຊ້ຮໍໂມນໄຟໂຕ (CA, AUC, BR ຫຼື GA) ນຳໄປສູ່ການຫຼຸດລົງຂອງການຜຸພັງຂອງໄຂມັນ (ປະລິມານ MDA). ບໍ່ພົບຄວາມແຕກຕ່າງລະຫວ່າງພືດ AC ຂອງສອງ genotypes ແລະພືດທີ່ຢູ່ພາຍໃຕ້ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ ແລະສີດພົ່ນດ້ວຍຮໍໂມນພືດ (ຄ່າ FW ທີ່ສັງເກດເຫັນໃນພືດ “F67” ມີຕັ້ງແຕ່ 4.38–6.77 µmol g-1, ແລະໃນພືດ FW “F2000” ມີຕັ້ງແຕ່ 2.84 ຫາ 9.18 µmol g-1 (ພືດ). ໃນທາງກົງກັນຂ້າມ, ການສັງເຄາະໂປຣລີນໃນພືດ “F67″ ແມ່ນຕໍ່າກວ່າໃນພືດ “F2000″ ພາຍໃຕ້ຄວາມກົດດັນລວມ, ເຊິ່ງນໍາໄປສູ່ການເພີ່ມຂຶ້ນຂອງການຜະລິດໂປຣລີນ. ໃນພືດເຂົ້າທີ່ມີຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ, ໃນທັງສອງການທົດລອງ, ໄດ້ມີການສັງເກດເຫັນວ່າການໃຫ້ຮໍໂມນເຫຼົ່ານີ້ເພີ່ມປະລິມານກົດອະມິໂນຂອງພືດ F2000 ຢ່າງຫຼວງຫຼາຍ (AUX ແລະ BR ແມ່ນ 30.44 ແລະ 18.34 µmol g-1) ຕາມລໍາດັບ (ຮູບທີ 1G).
ຜົນກະທົບຂອງການສີດພົ່ນຕົວຄວບຄຸມການຈະເລີນເຕີບໂຕຂອງພືດທາງໃບ ແລະ ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນລວມຕໍ່ອຸນຫະພູມເຮືອນຍອດຂອງພືດ ແລະ ດັດຊະນີຄວາມທົນທານທຽບເທົ່າ (RTI) ແມ່ນສະແດງຢູ່ໃນຮູບທີ 2A ແລະ B. ສຳລັບທັງສອງ genotypes, ອຸນຫະພູມເຮືອນຍອດຂອງພືດ AC ແມ່ນໃກ້ຄຽງກັບ 27°C, ແລະ ຂອງພືດ SC ແມ່ນປະມານ 28°C. ກັບ. ມັນຍັງໄດ້ສັງເກດເຫັນວ່າການປິ່ນປົວດ້ວຍທາງໃບດ້ວຍ CK ແລະ BR ເຮັດໃຫ້ອຸນຫະພູມເຮືອນຍອດຫຼຸດລົງ 2–3°C ເມື່ອທຽບກັບພືດ SC (ຮູບທີ 2A). RTI ສະແດງພຶດຕິກຳທີ່ຄ້າຍຄືກັນກັບຕົວແປທາງສະລີລະວິທະຍາອື່ນໆ, ສະແດງໃຫ້ເຫັນຄວາມແຕກຕ່າງທີ່ສຳຄັນ (P ≤ 0.01) ໃນການພົວພັນລະຫວ່າງການທົດລອງ ແລະ ການປິ່ນປົວ (ຮູບທີ 2B). ພືດ SC ສະແດງໃຫ້ເຫັນຄວາມທົນທານຂອງພືດຕ່ຳກວ່າໃນທັງສອງ genotypes (34.18% ແລະ 33.52% ສຳລັບຕົ້ນເຂົ້າ “F67” ແລະ “F2000” ຕາມລຳດັບ). ການໃຫ້ອາຫານຮໍໂມນພືດທາງໃບປັບປຸງ RTI ໃນພືດທີ່ໄດ້ຮັບຜົນກະທົບຈາກຄວາມກົດດັນອຸນຫະພູມສູງ. ຜົນກະທົບນີ້ເຫັນໄດ້ຊັດເຈນກວ່າໃນພືດ “F2000” ທີ່ສີດພົ່ນດ້ວຍ CC, ເຊິ່ງ RTI ແມ່ນ 97.69. ໃນທາງກົງກັນຂ້າມ, ຄວາມແຕກຕ່າງທີ່ສຳຄັນໄດ້ຖືກສັງເກດເຫັນພຽງແຕ່ໃນດັດຊະນີຄວາມເຄັ່ງຕຶງຂອງຜົນຜະລິດ (CSI) ຂອງຕົ້ນເຂົ້າພາຍໃຕ້ເງື່ອນໄຂຄວາມເຄັ່ງຕຶງຂອງການສີດພົ່ນທາງໃບ (P ≤ 0.01) (ຮູບທີ 2B). ມີພຽງແຕ່ຕົ້ນເຂົ້າທີ່ໄດ້ຮັບຜົນກະທົບຈາກຄວາມຮ້ອນທີ່ສັບສົນເທົ່ານັ້ນທີ່ສະແດງໃຫ້ເຫັນຄ່າດັດຊະນີຄວາມເຄັ່ງຕຶງສູງສຸດ (0.816). ເມື່ອຕົ້ນເຂົ້າຖືກສີດພົ່ນດ້ວຍຮໍໂມນພືດຕ່າງໆ, ດັດຊະນີຄວາມເຄັ່ງຕຶງຈະຕ່ຳກວ່າ (ຄ່າຕັ້ງແຕ່ 0.6 ຫາ 0.67). ສຸດທ້າຍ, ຕົ້ນເຂົ້າທີ່ປູກພາຍໃຕ້ເງື່ອນໄຂທີ່ດີທີ່ສຸດມີຄ່າ 0.138.
ຮູບທີ 2. ຜົນກະທົບຂອງຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນລວມ (40°/30°C ກາງເວັນ/ກາງຄືນ) ຕໍ່ອຸນຫະພູມເຮືອນຍອດ (A), ດັດຊະນີຄວາມທົນທານທຽບເທົ່າ (RTI) (B), ແລະ ດັດຊະນີຄວາມກົດດັນຂອງພືດ (CSI) (C) ຂອງພືດສອງຊະນິດ. genotypes ເຂົ້າເພື່ອການຄ້າ (F67 ແລະ F2000) ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວດ້ວຍຄວາມຮ້ອນທີ່ແຕກຕ່າງກັນ. ການປິ່ນປົວທີ່ປະເມີນສຳລັບແຕ່ລະ genotype ລວມມີ: ການຄວບຄຸມຢ່າງແທ້ຈິງ (AC), ການຄວບຄຸມຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ (SC), ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ + ອອກຊິນ (AUX), ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ + ຈິບເບເຣລລິນ (GA), ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ + ໄມໂຕເຈນຂອງເຊວ (CK), ແລະ ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ + ບຣາສຊີໂນສະເຕີຣອຍ. (BR). ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນລວມກ່ຽວຂ້ອງກັບການເຮັດໃຫ້ຕົ້ນເຂົ້າຖືກອຸນຫະພູມກາງເວັນ/ກາງຄືນສູງ (40°/30°C ກາງເວັນ/ກາງຄືນ). ແຕ່ລະຖັນສະແດງຄ່າສະເລ່ຍ ± ຄວາມຜິດພາດມາດຕະຖານຂອງຫ້າຈຸດຂໍ້ມູນ (n = 5). ຖັນຕາມດ້ວຍຕົວອັກສອນທີ່ແຕກຕ່າງກັນຊີ້ບອກເຖິງຄວາມແຕກຕ່າງທີ່ມີນัยສຳຄັນທາງສະຖິຕິຕາມການທົດສອບຂອງ Tukey (P ≤ 0.05). ຕົວອັກສອນທີ່ມີເຄື່ອງໝາຍເທົ່າກັບຊີ້ບອກວ່າຄ່າສະເລ່ຍບໍ່ມີນัยສຳຄັນທາງສະຖິຕິ (≤ 0.05).
ການວິເຄາະອົງປະກອບຫຼັກ (PCA) ເປີດເຜີຍວ່າຕົວແປທີ່ປະເມີນຢູ່ທີ່ 55 DAE ໄດ້ອະທິບາຍເຖິງ 66.1% ຂອງການຕອບສະໜອງທາງສະລີລະວິທະຍາ ແລະ ຊີວະເຄມີຂອງຕົ້ນເຂົ້າທີ່ໄດ້ຮັບຄວາມກົດດັນຈາກຄວາມຮ້ອນທີ່ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວດ້ວຍການສີດພົ່ນຕົວຄວບຄຸມການຈະເລີນເຕີບໂຕ (ຮູບທີ 3). ເວັກເຕີສະແດງເຖິງຕົວແປ ແລະ ຈຸດສະແດງເຖິງຕົວຄວບຄຸມການຈະເລີນເຕີບໂຕຂອງພືດ (GRs). ເວັກເຕີຂອງ gs, ປະລິມານ chlorophyll, ປະສິດທິພາບ quantum ສູງສຸດຂອງ PSII (Fv/Fm) ແລະ ພາລາມິເຕີທາງຊີວະເຄມີ (TChl, MDA ແລະ proline) ແມ່ນຢູ່ໃນມຸມໃກ້ກັບຕົ້ນກຳເນີດ, ຊີ້ບອກເຖິງຄວາມສຳພັນສູງລະຫວ່າງພຶດຕິກຳທາງສະລີລະວິທະຍາຂອງພືດ ແລະ ຕົວແປເຫຼົ່ານັ້ນ. ກຸ່ມໜຶ່ງ (V) ລວມມີເບ້ຍເຂົ້າທີ່ປູກຢູ່ທີ່ອຸນຫະພູມທີ່ດີທີ່ສຸດ (AT) ແລະ ຕົ້ນ F2000 ທີ່ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວດ້ວຍ CK ແລະ BA. ໃນເວລາດຽວກັນ, ຕົ້ນສ່ວນໃຫຍ່ທີ່ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວດ້ວຍ GR ໄດ້ສ້າງກຸ່ມແຍກຕ່າງຫາກ (IV), ແລະ ການປິ່ນປົວດ້ວຍ GA ໃນ F2000 ໄດ້ສ້າງກຸ່ມແຍກຕ່າງຫາກ (II). ໃນທາງກົງກັນຂ້າມ, ເບ້ຍເຂົ້າທີ່ຖືກຄວາມກົດດັນຈາກຄວາມຮ້ອນ (ກຸ່ມ I ແລະ III) ໂດຍບໍ່ມີການສີດພົ່ນຮໍໂມນພືດໃສ່ໃບ (ທັງສອງ genotypes ແມ່ນ SC) ຕັ້ງຢູ່ໃນເຂດກົງກັນຂ້າມກັບກຸ່ມ V, ສະແດງໃຫ້ເຫັນຜົນກະທົບຂອງຄວາມກົດດັນຈາກຄວາມຮ້ອນຕໍ່ສະລີລະວິທະຍາຂອງພືດ.
ຮູບທີ 3. ການວິເຄາະສອງຮູບແບບກ່ຽວກັບຜົນກະທົບຂອງຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນລວມ (40°/30°C ກາງເວັນ/ກາງຄືນ) ຕໍ່ພືດທີ່ມີສອງຈີໂນໄທບ໌ເຂົ້າ (F67 ແລະ F2000) ໃນເວລາ 55 ມື້ຫຼັງຈາກການງອກ (DAE). ຕົວຫຍໍ້: AC F67, ການຄວບຄຸມຢ່າງແທ້ຈິງ F67; SC F67, ການຄວບຄຸມຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ F67; AUX F67, ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ + ອົກຊິນ F67; GA F67, ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ + ກິບເບເຣວລິນ F67; CK F67, ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ + ການແບ່ງຈຸລັງ BR F67, ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ + brassinosteroid. F67; AC F2000, ການຄວບຄຸມຢ່າງແທ້ຈິງ F2000; SC F2000, ການຄວບຄຸມຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ F2000; AUX F2000, ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ + ອົກຊິນ F2000; GA F2000, ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ + ກິບເບເຣວລິນ F2000; CK F2000, ຄວາມກົດດັນຈາກຄວາມຮ້ອນ + ໄຊໂຕໄຄນິນ, BR F2000, ຄວາມກົດດັນຈາກຄວາມຮ້ອນ + ສະເຕີຣອຍທອງເຫລືອງ; F2000.
ຕົວແປຕ່າງໆເຊັ່ນ: ປະລິມານຄລໍໂຣຟິວ, ການນຳໄຟຟ້າຂອງປາກໃບ, ອັດຕາສ່ວນ Fv/Fm, CSI, MDA, RTI ແລະ ປະລິມານໂປຣລີນສາມາດຊ່ວຍໃຫ້ເຂົ້າໃຈການປັບຕົວຂອງຈີໂນໄທບເຂົ້າ ແລະ ປະເມີນຜົນກະທົບຂອງຍຸດທະສາດດ້ານກະສິກຳພາຍໃຕ້ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ (Sarsu et al., 2018; Quintero-Calderon et al., 2021). ຈຸດປະສົງຂອງການທົດລອງນີ້ແມ່ນເພື່ອປະເມີນຜົນກະທົບຂອງການນຳໃຊ້ຕົວຄວບຄຸມການຈະເລີນເຕີບໂຕສີ່ຕົວຕໍ່ຕົວກຳນົດທາງສະລີລະວິທະຍາ ແລະ ຊີວະເຄມີຂອງເບ້ຍເຂົ້າພາຍໃຕ້ເງື່ອນໄຂຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນທີ່ສັບສົນ. ການທົດສອບເບ້ຍແມ່ນວິທີທີ່ງ່າຍດາຍ ແລະ ໄວສຳລັບການປະເມີນຕົ້ນເຂົ້າພ້ອມໆກັນໂດຍຂຶ້ນກັບຂະໜາດ ຫຼື ສະພາບຂອງພື້ນຖານໂຄງລ່າງທີ່ມີຢູ່ (Sarsu et al. 2018). ຜົນໄດ້ຮັບຂອງການສຶກສາຄັ້ງນີ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນລວມເຮັດໃຫ້ເກີດການຕອບສະໜອງທາງສະລີລະວິທະຍາ ແລະ ຊີວະເຄມີທີ່ແຕກຕ່າງກັນໃນສອງຈີໂນໄທບເຂົ້າ, ເຊິ່ງຊີ້ບອກເຖິງຂະບວນການປັບຕົວ. ຜົນໄດ້ຮັບເຫຼົ່ານີ້ຍັງຊີ້ບອກວ່າການສີດພົ່ນຕົວຄວບຄຸມການຈະເລີນເຕີບໂຕທາງໃບ (ສ່ວນໃຫຍ່ແມ່ນ cytokinins ແລະ brassinosteroids) ຊ່ວຍໃຫ້ເຂົ້າປັບຕົວເຂົ້າກັບຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນທີ່ສັບສົນ ຍ້ອນວ່າຄວາມໂປດປານສ່ວນໃຫຍ່ແມ່ນມີຜົນກະທົບຕໍ່ gs, RWC, ອັດຕາສ່ວນ Fv/Fm, ເມັດສີສັງເຄາະແສງ ແລະ ປະລິມານ proline.
ການນຳໃຊ້ຕົວຄວບຄຸມການຈະເລີນເຕີບໂຕຊ່ວຍປັບປຸງສະຖານະພາບນ້ຳຂອງຕົ້ນເຂົ້າພາຍໃຕ້ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ, ເຊິ່ງອາດຈະກ່ຽວຂ້ອງກັບຄວາມກົດດັນທີ່ສູງຂຶ້ນ ແລະ ອຸນຫະພູມເຮືອນຍອດຂອງພືດທີ່ຕ່ຳລົງ. ການສຶກສານີ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າໃນບັນດາຕົ້ນເຂົ້າ “F2000” (genotype ທີ່ອ່ອນໄຫວ), ຕົ້ນເຂົ້າທີ່ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວດ້ວຍ CK ຫຼື BR ເປັນຫຼັກມີຄ່າ gs ສູງກວ່າ ແລະ ຄ່າ PCT ຕ່ຳກວ່າຕົ້ນເຂົ້າທີ່ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວດ້ວຍ SC. ການສຶກສາກ່ອນໜ້ານີ້ຍັງໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າ gs ແລະ PCT ແມ່ນຕົວຊີ້ວັດທາງສະລີລະວິທະຍາທີ່ຖືກຕ້ອງເຊິ່ງສາມາດກຳນົດການຕອບສະໜອງແບບປັບຕົວຂອງຕົ້ນເຂົ້າ ແລະ ຜົນກະທົບຂອງຍຸດທະສາດດ້ານກະສິກຳຕໍ່ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ (Restrepo-Diaz ແລະ Garces-Varon, 2013; Sarsu et al., 2018; Quintero). -Carr DeLong et al., 2021). ໃບ CK ຫຼື BR ເສີມຂະຫຍາຍ g ພາຍໃຕ້ຄວາມກົດດັນເພາະວ່າຮໍໂມນພືດເຫຼົ່ານີ້ສາມາດສົ່ງເສີມການເປີດປາກໃບຜ່ານການພົວພັນສັງເຄາະກັບໂມເລກຸນສັນຍານອື່ນໆເຊັ່ນ ABA (ຕົວສົ່ງເສີມການປິດປາກໃບພາຍໃຕ້ຄວາມກົດດັນທີ່ບໍ່ມີຊີວິດຊີວາ) (Macková et al., 2013; Zhou et al., 2013). 2013). , 2014). ການເປີດຂອງປາກໃບຊ່ວຍສົ່ງເສີມການເຢັນລົງຂອງໃບ ແລະ ຊ່ວຍຫຼຸດຜ່ອນອຸນຫະພູມເຮືອນຍອດ (Sonjaroon et al., 2018; Quintero-Calderón et al., 2021). ດ້ວຍເຫດຜົນເຫຼົ່ານີ້, ອຸນຫະພູມເຮືອນຍອດຂອງຕົ້ນເຂົ້າທີ່ສີດດ້ວຍ CK ຫຼື BR ອາດຈະຕໍ່າກວ່າພາຍໃຕ້ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນລວມ.
ຄວາມກົດດັນຈາກອຸນຫະພູມສູງສາມາດຫຼຸດຜ່ອນປະລິມານເມັດສີສັງເຄາະແສງຂອງໃບ (Chen et al., 2017; Ahammed et al., 2018). ໃນການສຶກສາຄັ້ງນີ້, ເມື່ອຕົ້ນເຂົ້າຢູ່ພາຍໃຕ້ຄວາມກົດດັນຈາກຄວາມຮ້ອນ ແລະ ບໍ່ໄດ້ສີດພົ່ນດ້ວຍສານຄວບຄຸມການຈະເລີນເຕີບໂຕຂອງພືດໃດໆ, ເມັດສີສັງເຄາະແສງມີແນວໂນ້ມທີ່ຈະຫຼຸດລົງໃນທັງສອງ genotypes (ຕາຕະລາງທີ 2). Feng et al. (2013) ຍັງໄດ້ລາຍງານການຫຼຸດລົງຢ່າງຫຼວງຫຼາຍຂອງປະລິມານ chlorophyll ໃນໃບຂອງສອງ genotypes ເຂົ້າສາລີທີ່ໄດ້ຮັບຄວາມກົດດັນຈາກຄວາມຮ້ອນ. ການໄດ້ຮັບອຸນຫະພູມສູງມັກຈະເຮັດໃຫ້ປະລິມານ chlorophyll ຫຼຸດລົງ, ເຊິ່ງອາດຈະເປັນຍ້ອນການຫຼຸດລົງຂອງການສັງເຄາະ chlorophyll, ການເສື່ອມສະພາບຂອງເມັດສີ, ຫຼືຜົນກະທົບລວມຂອງມັນພາຍໃຕ້ຄວາມກົດດັນຈາກຄວາມຮ້ອນ (Fahad et al., 2017). ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ຕົ້ນເຂົ້າທີ່ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວດ້ວຍ CK ແລະ BA ສ່ວນໃຫຍ່ເພີ່ມຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງເມັດສີສັງເຄາະແສງຂອງໃບພາຍໃຕ້ຄວາມກົດດັນຈາກຄວາມຮ້ອນ. ຜົນໄດ້ຮັບທີ່ຄ້າຍຄືກັນນີ້ຍັງໄດ້ລາຍງານໂດຍ Jespersen ແລະ Huang (2015) ແລະ Suchsagunpanit et al. (2015), ຜູ້ທີ່ສັງເກດເຫັນການເພີ່ມຂຶ້ນຂອງປະລິມານຄໍໂລຟິວໃນໃບຫຼັງຈາກການໃຊ້ຮໍໂມນ zeatin ແລະ epibrassinosteroid ໃນຫຍ້າເບນທິ້ງ ແລະ ເຂົ້າທີ່ມີຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນຕາມລໍາດັບ. ຄໍາອະທິບາຍທີ່ສົມເຫດສົມຜົນສໍາລັບເຫດຜົນທີ່ CK ແລະ BR ສົ່ງເສີມການເພີ່ມຂຶ້ນຂອງປະລິມານຄໍໂລຟິວໃນໃບພາຍໃຕ້ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນລວມແມ່ນວ່າ CK ອາດຈະເສີມຂະຫຍາຍການເລີ່ມຕົ້ນຂອງການກະຕຸ້ນຢ່າງຕໍ່ເນື່ອງຂອງໂປຣໂມເຕີການສະແດງອອກ (ເຊັ່ນ: ໂປຣໂມເຕີກະຕຸ້ນການເຖົ້າແກ່ (SAG12) ຫຼືໂປຣໂມເຕີ HSP18) ແລະຫຼຸດຜ່ອນການສູນເສຍຄໍໂລຟິວໃນໃບ. , ຊັກຊ້າການເຖົ້າແກ່ຂອງໃບ ແລະ ເພີ່ມຄວາມຕ້ານທານຂອງພືດຕໍ່ຄວາມຮ້ອນ (Liu et al., 2020). BR ສາມາດປົກປ້ອງຄໍໂລຟິວໃນໃບ ແລະ ເພີ່ມປະລິມານຄໍໂລຟິວໃນໃບໂດຍການກະຕຸ້ນ ຫຼື ການກະຕຸ້ນການສັງເຄາະຂອງເອນໄຊມ໌ທີ່ກ່ຽວຂ້ອງກັບການສັງເຄາະຄໍໂລຟິວພາຍໃຕ້ເງື່ອນໄຂຄວາມກົດດັນ (Sharma et al., 2017; Siddiqui et al., 2018). ສຸດທ້າຍ, ຮໍໂມນໄຟໂຕສອງຊະນິດ (CK ແລະ BR) ຍັງສົ່ງເສີມການສະແດງອອກຂອງໂປຣຕີນຊ໊ອກຄວາມຮ້ອນ ແລະ ປັບປຸງຂະບວນການປັບຕົວທາງເມຕາໂບລິກຕ່າງໆ, ເຊັ່ນ: ການເພີ່ມການສັງເຄາະຄລໍໂຣຟິວ (Sharma et al., 2017; Liu et al., 2020).
ພາລາມິເຕີການເຍືອງແສງຂອງຄລໍໂຣຟິວໃຫ້ວິທີການທີ່ວ່ອງໄວ ແລະ ບໍ່ທຳລາຍເຊິ່ງສາມາດປະເມີນຄວາມທົນທານຂອງພືດ ຫຼື ການປັບຕົວເຂົ້າກັບສະພາບຄວາມກົດດັນທີ່ບໍ່ມີຊີວິດຊີວາ (Chaerle et al. 2007; Kalaji et al. 2017). ພາລາມິເຕີຕ່າງໆເຊັ່ນ: ອັດຕາສ່ວນ Fv/Fm ໄດ້ຖືກນໍາໃຊ້ເປັນຕົວຊີ້ວັດຂອງການປັບຕົວຂອງພືດຕໍ່ກັບສະພາບຄວາມກົດດັນ (Alvarado-Sanabria et al. 2017; Chavez-Arias et al. 2020). ໃນການສຶກສານີ້, ພືດ SC ສະແດງໃຫ້ເຫັນຄ່າຕໍ່າສຸດຂອງຕົວແປນີ້, ສ່ວນໃຫຍ່ແມ່ນຕົ້ນເຂົ້າ "F2000". Yin et al. (2010) ຍັງພົບວ່າອັດຕາສ່ວນ Fv/Fm ຂອງໃບເຂົ້າທີ່ແຕກກິ່ງສູງສຸດຫຼຸດລົງຢ່າງຫຼວງຫຼາຍທີ່ອຸນຫະພູມສູງກວ່າ 35°C. ອີງຕາມ Feng et al. (2013), ອັດຕາສ່ວນ Fv/Fm ຕ່ຳກວ່າພາຍໃຕ້ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນຊີ້ບອກວ່າອັດຕາການຈັບ ແລະ ການປ່ຽນພະລັງງານກະຕຸ້ນໂດຍສູນປະຕິກິລິຍາ PSII ຫຼຸດລົງ, ຊີ້ບອກວ່າສູນປະຕິກິລິຍາ PSII ຈະແຕກສ່ວນພາຍໃຕ້ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ. ການສັງເກດການນີ້ຊ່ວຍໃຫ້ພວກເຮົາສະຫຼຸບໄດ້ວ່າການລົບກວນໃນອຸປະກອນການສັງເຄາະແສງແມ່ນເຫັນໄດ້ຊັດເຈນກວ່າໃນພັນພືດທີ່ອ່ອນໄຫວ (Fedearroz 2000) ກ່ວາໃນພັນພືດທີ່ຕ້ານທານ (Fedearroz 67).
ການໃຊ້ CK ຫຼື BR ໂດຍທົ່ວໄປແລ້ວຊ່ວຍເພີ່ມປະສິດທິພາບຂອງ PSII ພາຍໃຕ້ສະພາບຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນທີ່ສັບສົນ. ຜົນໄດ້ຮັບທີ່ຄ້າຍຄືກັນນີ້ໄດ້ຮັບໂດຍ Suchsagunpanit et al. (2015), ຜູ້ທີ່ສັງເກດເຫັນວ່າການໃຊ້ BR ເພີ່ມປະສິດທິພາບຂອງ PSII ພາຍໃຕ້ສະພາບຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນໃນເຂົ້າ. Kumar et al. (2020) ຍັງພົບວ່າຕົ້ນຖົ່ວທີ່ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວດ້ວຍ CK (6-benzyladenine) ແລະ ໄດ້ຮັບສະພາບຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນເພີ່ມອັດຕາສ່ວນ Fv/Fm, ໂດຍສະຫຼຸບວ່າການໃສ່ CK ທາງໃບໂດຍການກະຕຸ້ນວົງຈອນເມັດສີ zeaxanthin ໄດ້ສົ່ງເສີມກິດຈະກຳຂອງ PSII. ນອກຈາກນັ້ນ, ການສີດພົ່ນໃບ BR ຍັງຊ່ວຍໃຫ້ການສັງເຄາະແສງຂອງ PSII ພາຍໃຕ້ສະພາບຄວາມກົດດັນລວມ, ຊີ້ໃຫ້ເຫັນວ່າການໃຊ້ຮໍໂມນໄຟນີ້ເຮັດໃຫ້ການກະຈາຍພະລັງງານກະຕຸ້ນຂອງໜວດ PSII ຫຼຸດລົງ ແລະ ສົ່ງເສີມການສະສົມຂອງໂປຣຕີນຊ໊ອກຄວາມຮ້ອນຂະໜາດນ້ອຍໃນ chloroplasts (Ogweno et al. 2008; Kothari ແລະ Lachowitz). , 2021).
ປະລິມານ MDA ແລະ ໂປຣລີນມັກຈະເພີ່ມຂຶ້ນເມື່ອພືດຢູ່ພາຍໃຕ້ຄວາມກົດດັນທີ່ບໍ່ມີຊີວິດຊີວາເມື່ອທຽບກັບພືດທີ່ປູກພາຍໃຕ້ເງື່ອນໄຂທີ່ດີທີ່ສຸດ (Alvarado-Sanabria et al. 2017). ການສຶກສາກ່ອນໜ້ານີ້ຍັງໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າລະດັບ MDA ແລະ ໂປຣລີນແມ່ນຕົວຊີ້ວັດທາງຊີວະເຄມີທີ່ສາມາດນຳໃຊ້ເພື່ອເຂົ້າໃຈຂະບວນການປັບຕົວ ຫຼື ຜົນກະທົບຂອງການປະຕິບັດດ້ານກະສິກຳໃນເຂົ້າພາຍໃຕ້ອຸນຫະພູມສູງໃນເວລາກາງເວັນ ຫຼື ກາງຄືນ (Alvarado-Sanabria et al., 2017; Quintero-Calderón et al. ., 2021). ການສຶກສາເຫຼົ່ານີ້ຍັງສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າປະລິມານ MDA ແລະ ໂປຣລີນມັກຈະສູງຂຶ້ນໃນຕົ້ນເຂົ້າທີ່ຮັບອຸນຫະພູມສູງໃນຕອນກາງຄືນ ຫຼື ໃນລະຫວ່າງກາງເວັນຕາມລຳດັບ. ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ການສີດພົ່ນທາງໃບຂອງ CK ແລະ BR ປະກອບສ່ວນເຮັດໃຫ້ MDA ຫຼຸດລົງ ແລະ ການເພີ່ມຂຶ້ນຂອງລະດັບໂປຣລີນ, ສ່ວນໃຫຍ່ແມ່ນຢູ່ໃນ genotype ທີ່ທົນທານຕໍ່ພືດ (Federroz 67). ການສີດພົ່ນ CK ສາມາດສົ່ງເສີມການສະແດງອອກຫຼາຍເກີນໄປຂອງ cytokinin oxidase/dehydrogenase, ດັ່ງນັ້ນຈຶ່ງເພີ່ມປະລິມານຂອງສານປະກອບປ້ອງກັນເຊັ່ນ: betaine ແລະ proline (Liu et al., 2020). BR ສົ່ງເສີມການກະຕຸ້ນຂອງ osmoprotectants ເຊັ່ນ: betaine, ນ້ຳຕານ, ແລະ ກົດອະມິໂນ (ລວມທັງ proline ອິດສະຫຼະ), ຮັກສາຄວາມສົມດຸນຂອງ osmotic ຂອງຈຸລັງພາຍໃຕ້ສະພາບແວດລ້ອມທີ່ບໍ່ດີຫຼາຍຢ່າງ (Kothari ແລະ Lachowiec, 2021).
ດັດຊະນີຄວາມຕຶງຄຽດຂອງພືດ (CSI) ແລະ ດັດຊະນີຄວາມທົນທານທຽບເທົ່າ (RTI) ແມ່ນໃຊ້ເພື່ອກຳນົດວ່າການປິ່ນປົວທີ່ກຳລັງປະເມີນຜົນຊ່ວຍຫຼຸດຜ່ອນຄວາມຕຶງຄຽດຕ່າງໆ (abiotic ແລະ biotic) ແລະ ມີຜົນກະທົບໃນທາງບວກຕໍ່ສະລີລະວິທະຍາຂອງພືດ (Castro-Duque et al., 2020; Chavez-Arias et al., 2020). ຄ່າ CSI ສາມາດຢູ່ໃນລະຫວ່າງ 0 ຫາ 1, ເຊິ່ງເປັນຕົວແທນຂອງສະພາບທີ່ບໍ່ມີຄວາມຕຶງຄຽດ ແລະ ສະພາບຄວາມຕຶງຄຽດຕາມລຳດັບ (Lee et al., 2010). ຄ່າ CSI ຂອງພືດທີ່ມີຄວາມຮ້ອນ (SC) ຢູ່ໃນລະຫວ່າງ 0.8 ຫາ 0.9 (ຮູບທີ 2B), ຊີ້ບອກວ່າຕົ້ນເຂົ້າໄດ້ຮັບຜົນກະທົບທາງລົບຈາກຄວາມຕຶງຄຽດລວມ. ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ການສີດພົ່ນທາງໃບຂອງ BC (0.6) ຫຼື CK (0.6) ສ່ວນໃຫຍ່ແມ່ນນຳໄປສູ່ການຫຼຸດລົງຂອງຕົວຊີ້ວັດນີ້ພາຍໃຕ້ສະພາບຄວາມຕຶງຄຽດທີ່ບໍ່ມີຊີວິດຊີວາເມື່ອທຽບກັບຕົ້ນເຂົ້າ SC. ໃນພືດ F2000, RTI ສະແດງໃຫ້ເຫັນການເພີ່ມຂຶ້ນສູງຂຶ້ນເມື່ອໃຊ້ CA (97.69%) ແລະ BC (60.73%) ເມື່ອທຽບກັບ SA (33.52%), ຊີ້ໃຫ້ເຫັນວ່າຕົວຄວບຄຸມການຈະເລີນເຕີບໂຕຂອງພືດເຫຼົ່ານີ້ຍັງປະກອບສ່ວນປັບປຸງການຕອບສະໜອງຂອງເຂົ້າຕໍ່ກັບຄວາມທົນທານຕໍ່ສ່ວນປະກອບ. ຄວາມຮ້ອນເກີນໄປ. ດັດຊະນີເຫຼົ່ານີ້ໄດ້ຖືກສະເໜີໃຫ້ຄຸ້ມຄອງສະພາບຄວາມກົດດັນໃນຊະນິດພັນທີ່ແຕກຕ່າງກັນ. ການສຶກສາທີ່ດຳເນີນໂດຍ Lee et al. (2010) ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າ CSI ຂອງສອງພັນຝ້າຍພາຍໃຕ້ຄວາມກົດດັນນ້ຳປານກາງແມ່ນປະມານ 0.85, ໃນຂະນະທີ່ຄ່າ CSI ຂອງພັນທີ່ມີຊົນລະປະທານດີຢູ່ໃນລະຫວ່າງ 0.4 ຫາ 0.6, ສະຫຼຸບວ່າດັດຊະນີນີ້ແມ່ນຕົວຊີ້ວັດການປັບຕົວຂອງນ້ຳຂອງພັນ. ເງື່ອນໄຂຄວາມກົດດັນ. ຍິ່ງໄປກວ່ານັ້ນ, Chavez-Arias et al. (2020) ໄດ້ປະເມີນປະສິດທິພາບຂອງຕົວກະຕຸ້ນສັງເຄາະເປັນກົນລະຍຸດການຄຸ້ມຄອງຄວາມຄວາມກົດດັນທີ່ສົມບູນແບບໃນພືດ C. elegans ແລະພົບວ່າພືດທີ່ສີດພົ່ນດ້ວຍສານປະກອບເຫຼົ່ານີ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນ RTI ສູງຂຶ້ນ (65%). ອີງຕາມຂ້າງເທິງ, CK ແລະ BR ສາມາດພິຈາລະນາໄດ້ວ່າເປັນຍຸດທະສາດດ້ານກະສິກຳທີ່ມີຈຸດປະສົງເພື່ອເພີ່ມຄວາມທົນທານຕໍ່ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນທີ່ສັບສົນ, ຍ້ອນວ່າຕົວຄວບຄຸມການຈະເລີນເຕີບໂຕຂອງພືດເຫຼົ່ານີ້ກະຕຸ້ນການຕອບສະໜອງທາງຊີວະເຄມີ ແລະ ສະລີລະວິທະຍາໃນທາງບວກ.
ໃນສອງສາມປີຜ່ານມາ, ການຄົ້ນຄວ້າເຂົ້າໃນປະເທດໂຄລໍາເບຍໄດ້ສຸມໃສ່ການປະເມີນ genotypes ທີ່ທົນທານຕໍ່ອຸນຫະພູມກາງເວັນ ຫຼື ກາງຄືນສູງໂດຍໃຊ້ລັກສະນະທາງສະລີລະວິທະຍາ ຫຼື ຊີວະເຄມີ (Sánchez-Reinoso et al., 2014; Alvarado-Sanabria et al., 2021). ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ໃນສອງສາມປີຜ່ານມາ, ການວິເຄາະເຕັກໂນໂລຢີທີ່ໃຊ້ໄດ້ຈິງ, ປະຫຍັດ ແລະ ມີກຳໄລໄດ້ກາຍເປັນສິ່ງສຳຄັນເພີ່ມຂຶ້ນເພື່ອສະເໜີການຄຸ້ມຄອງພືດແບບປະສົມປະສານເພື່ອປັບປຸງຜົນກະທົບຂອງໄລຍະເວລາທີ່ສັບສົນຂອງຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນໃນປະເທດ (Calderón-Páez et al., 2021; Quintero-Calderon et al., 2021). ດັ່ງນັ້ນ, ການຕອບສະໜອງທາງສະລີລະວິທະຍາ ແລະ ຊີວະເຄມີຂອງຕົ້ນເຂົ້າຕໍ່ກັບຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນທີ່ສັບສົນ (40°C ກາງເວັນ/30°C ກາງຄືນ) ທີ່ສັງເກດເຫັນໃນການສຶກສານີ້ຊີ້ໃຫ້ເຫັນວ່າການສີດພົ່ນທາງໃບດ້ວຍ CK ຫຼື BR ອາດເປັນວິທີການຄຸ້ມຄອງພືດທີ່ເໝາະສົມເພື່ອຫຼຸດຜ່ອນຜົນກະທົບທາງລົບ. ຜົນກະທົບຂອງໄລຍະເວລາຂອງຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນປານກາງ. ການປິ່ນປົວເຫຼົ່ານີ້ໄດ້ປັບປຸງຄວາມທົນທານຂອງ genotypes ເຂົ້າທັງສອງ (CSI ຕ່ຳ ແລະ RTI ສູງ), ສະແດງໃຫ້ເຫັນເຖິງທ່າອ່ຽງທົ່ວໄປໃນການຕອບສະໜອງທາງສະລີລະວິທະຍາ ແລະ ຊີວະເຄມີຂອງພືດພາຍໃຕ້ຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນລວມ. ການຕອບສະໜອງຫຼັກຂອງຕົ້ນເຂົ້າແມ່ນການຫຼຸດລົງຂອງປະລິມານ GC, ຄໍໂລຟິວທັງໝົດ, ຄໍໂລຟິວ α ແລະ β ແລະ ແຄໂຣທີນອຍ. ນອກຈາກນັ້ນ, ພືດຍັງໄດ້ຮັບຜົນກະທົບຈາກຄວາມເສຍຫາຍຂອງ PSII (ຕົວກໍານົດການ fluorescence ຂອງຄໍໂລຟິວຫຼຸດລົງເຊັ່ນ: ອັດຕາສ່ວນ Fv/Fm) ແລະ ການເພີ່ມຂຶ້ນຂອງ lipid peroxidation. ໃນທາງກົງກັນຂ້າມ, ເມື່ອເຂົ້າໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວດ້ວຍ CK ແລະ BR, ຜົນກະທົບທາງລົບເຫຼົ່ານີ້ໄດ້ຫຼຸດລົງ ແລະ ປະລິມານໂປຣລີນເພີ່ມຂຶ້ນ (ຮູບທີ 4).
ຮູບທີ 4. ຮູບແບບແນວຄວາມຄິດຂອງຜົນກະທົບຂອງຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນລວມ ແລະ ການສີດພົ່ນຕົວຄວບຄຸມການຈະເລີນເຕີບໂຕຂອງພືດທາງໃບໃສ່ຕົ້ນເຂົ້າ. ລູກສອນສີແດງ ແລະ ສີຟ້າຊີ້ບອກເຖິງຜົນກະທົບທາງລົບ ຫຼື ທາງບວກຂອງການພົວພັນລະຫວ່າງຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນ ແລະ ການນຳໃຊ້ທາງໃບຂອງ BR (brassinosteroid) ແລະ CK (cytokinin) ຕໍ່ການຕອບສະໜອງທາງສະລີລະວິທະຍາ ແລະ ທາງຊີວະເຄມີຕາມລຳດັບ. gs: ຄວາມນຳໄຟຟ້າຂອງປາກໃບ; Chl ທັງໝົດ: ປະລິມານຄໍໂລຟິວທັງໝົດ; Chl α: ປະລິມານຄໍໂລຟິວ β; Cx+c: ປະລິມານແຄໂຣທີນອຍ;
ສະຫຼຸບແລ້ວ, ການຕອບສະໜອງທາງສະລີລະວິທະຍາ ແລະ ຊີວະເຄມີໃນການສຶກສາຄັ້ງນີ້ຊີ້ໃຫ້ເຫັນວ່າຕົ້ນເຂົ້າ Fedearroz 2000 ມີຄວາມອ່ອນໄຫວຕໍ່ກັບໄລຍະເວລາຂອງຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນທີ່ສັບສົນຫຼາຍກວ່າຕົ້ນເຂົ້າ Fedearroz 67. ຕົວຄວບຄຸມການເຕີບໂຕທັງໝົດທີ່ຖືກປະເມີນໃນການສຶກສາຄັ້ງນີ້ (ອອກຊິນ, ຈິບເບເຣລລິນ, ໄຊໂຕໄຄນິນ, ຫຼື ບຣາສຊີໂນສະເຕີຣອຍ) ໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນເຖິງການຫຼຸດຜ່ອນຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນລວມໃນລະດັບໜຶ່ງ. ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ໄຊໂຕໄຄນິນ ແລະ ບຣາສຊີໂນສະເຕີຣອຍ ເຮັດໃຫ້ເກີດການປັບຕົວຂອງພືດທີ່ດີຂຶ້ນ ຍ້ອນວ່າຕົວຄວບຄຸມການເຕີບໂຕຂອງພືດທັງສອງໄດ້ເພີ່ມປະລິມານຄລໍໂຣຟິວ, ພາລາມິເຕີການເຍືອງແສງຂອງອັລຟາ-ຄລໍໂຣຟິວ, gs ແລະ RWC ເມື່ອທຽບກັບຕົ້ນເຂົ້າທີ່ບໍ່ມີການນຳໃຊ້ໃດໆ, ແລະຍັງຫຼຸດຜ່ອນປະລິມານ MDA ແລະ ອຸນຫະພູມເຮືອນຍອດ. ສະຫຼຸບແລ້ວ, ພວກເຮົາສະຫຼຸບໄດ້ວ່າການນຳໃຊ້ຕົວຄວບຄຸມການເຕີບໂຕຂອງພືດ (ໄຊໂຕໄຄນິນ ແລະ ບຣາສຊີໂນສະເຕີຣອຍ) ເປັນເຄື່ອງມືທີ່ເປັນປະໂຫຍດໃນການຈັດການສະພາບຄວາມກົດດັນໃນພືດເຂົ້າທີ່ເກີດຈາກຄວາມກົດດັນຄວາມຮ້ອນທີ່ຮຸນແຮງໃນຊ່ວງເວລາທີ່ອຸນຫະພູມສູງ.
ເອກະສານຕົ້ນສະບັບທີ່ນຳສະເໜີໃນການສຶກສາແມ່ນລວມຢູ່ໃນບົດຄວາມ, ແລະ ການສອບຖາມເພີ່ມເຕີມສາມາດສົ່ງໄປຫາຜູ້ຂຽນທີ່ສອດຄ້ອງກັນໄດ້.